现代科学仪器
ModemScientificInstruments
2008年10月
高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量
、
卢业举程静蒋俊树
(国家农副加工食品质量监督检验中心合肥230051)
E—mail:luyeju998@sina.eonl
摘要本文对我国允许使用TBHQ的食品样品的前处理方法进行详细研究,优化了样品处理及分析条件,建立了液相色谱一荧光检测器法(HPLC—FD)对食品中TBHQ进行定量检测的方法:样品经乙腈提取其中的TBHQ,经反相C18色谱柱分离后,用荧光检测器检测,以保留时间定性,面积外标法定量。最低检出限0.05mg/L,线性范围0.1
ms/L一10
ms/L。本方法灵敏度高,能简便、快速、准确地检测食品中抗氧化剂TBttQ。
关键词食品;叔丁基对苯二酚(TBHQ);检测中图分类号0657.7+2
虽然TBHQ的安全性已通过了联合国粮农组织
和世界卫生组织(FAO/WHO)评价…,但是,有些国
涡混合器,振荡器,微孔过滤器:孑L径0.451xm,有机溶
剂型滤膜。1.2试验方法1.2.1色谱条件
家不允许食品中含有TBHQ,如欧盟和日本。而美国
早在1972年就批准使用TBHQ,目前已有30多个国家和地区允许在食用油及油炸食品中使用TBHQ旧J。
色谱柱:美国安捷伦公司生产的C18柱(4.6.mm
×250
我同于1991年批准使用,食品添加剂使用卫生
标准GB2760最大使用限量为200mg/kg,允许在食用
mm,59m)。
流动相:A溶剂:乙腈,B溶剂:1.5%乙酸。线形梯度洗脱:0—10.Omin,A溶剂:B溶剂=
40:60;11.0—18.0
油脂、油炸食品、饼干等9种食品中使用TBHQ。
目前,国内外的一些高校及检疫检测机构对抗氧化剂的检测已经采取了一些措施和方法。主要有气
rain,A溶剂:B溶剂=100:0;
19.0~22.0min,A溶剂:B溶剂=40:60。
流速:1.0mL/min。检测波长:激发波长:293nm,发射波长:332nm。进样量:lOlL。1.2.2标准溶液配制
相色谱法∞J,气相色谱一质谱联用法HJ,高效液相色
谱法帕J,液相色谱一质谱联用法”1等。
由于气相色谱法样品处理繁琐,质谱法的质谱检测器的普及率不是很高,液相色谱法的多数研究者使用的紫外检测器的灵敏度较低怕J,本方法结合液相色谱法的样品处理简单,荧光检测器的高灵敏度的优
点,减轻了检测人员的劳动强度,提高了检测灵敏度。
1)叔丁基对苯二酚(TBHQ)标准储备液:准确称
取100mgTBHQ.加饱和乙腈溶解定容至lOOmL。TB—
HQ含量1mg/mL,作为贮备液。
2)TBHQ标准使用溶液:移取1mLTBHQ的储备液,加饱和乙腈定容至100mL,分别移取1,5,10,20,50raL该TBHQ溶液,放人lOOmL容量瓶,加饱和乙腈
1
验部分
至刻度,制成TBHQ含量分别为0.1,0.5,1,2,5ixg/
1.1主要仪器与试剂
实验用水均为高纯水;叔丁基对苯二酚(TBHQ)标准品:(Dr.EhrensterferGmbH)纯度:98%。冰乙酸:分析纯。L一抗坏血酸棕榈酸酯:分析纯。正己烷:分析纯。乙腈:色谱纯及分析纯。饱和乙腈:将乙腈和正己烷混合,在分液漏斗中充分振摇。静置分
mL的TBHQ标准溶液,用于制定标准曲线。1.2.3样品前处理
称取混合均匀的样品2.59(食用油脂样品109)
(精确至0.0019),置于lOOmL具塞锥形瓶中,用20mL饱和乙腈振荡提取5min,再加入20mL正己烷继续振荡5min,过滤到分液漏斗中,静置分层后,收
集下层乙腈层;再向样品残渣中加入20mL正己烷振荡提取lOmin,再过滤到分液漏斗中,加入20raL乙腈,振摇lmin,静置分层,收集合并乙腈层定容至50raL容
层,收集下层乙腈液,于1L该溶液中溶解100mg/L一抗坏血酸棕榈酸酯。该溶液称作“饱和乙腈”。日本岛津LC一2010A高效液相色谱仪附荧光检测器,漩
收稿日期:2008-08—14
作者简介:卢业举,男(1967一),研究生,研究方向:食品、农产品品质分析。
万方数据
2008年第5期
卢、业举等:高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量一——
:59:
量瓶中。经0.45Ixm滤膜过滤作为测试液。1.2.4定量方法(外标法)
根据样品不同类型,用不同的样品处理方法进行样品处理,取系列标准溶液和样品处理液各10恤L,进行高效液相色谱分析,以标准溶液峰的保留时间为依据进行定性,以标准溶液浓度对峰面积制作校正曲线,对样品进行定量。1・2・5结果计算
食品中TBHQ的含量按照一F式i-I-%:
X=1000CVl/m
式中:
x——被测食品中TBItQ含量,g/kg;c——样品溶液中TBHQ浓度,I山g/mL;y一一乙腈溶液最终定容的总体积,mL;m——称取的样品质量,g。2果与讨论
2.1样品前处理方法的选择2.1.1样品提取溶剂的选择
一般食品中TBHQ的样品处理多采用有机溶剂(如乙腈、甲醇、乙醇、异丙醇等)提取,然后用与前一种有机溶剂互不相溶的另外一种有机溶剂(正己烷、环己烷等)去除提取液中的油脂的方法。根据溶剂的极性:乙腈>甲醇>乙醇>异丙醇>丙酮>乙酸乙酯>环己烷>正己烷,可见乙腈和正己烷两者极性差别最大,可分别作为提取和去脂两种溶剂。2.1.2萃取次数对回收率的影响
通过试验发现TBHQ在乙腈和正己烷中的分配比大概在97:3左右,也就是说经过一次液液萃取,原来在正己烷中的TBHQ还残留3%;那么
再经过第2次液液萃取,正己烷中TBHQ还残留
3%半3%,即0.09%,可以忽略不计。所以,在样品提取工作中,我们用20mL正己烷溶解、提取样
品中的TBHQ,再分别用20mL乙腈苇取2次,合并乙腈萃取液即可。
2.1.3提取溶剂和萃取溶剂的用量(一次萃取)对回收率的影响
分别用10,20,30,50mL的正己烷提取样品中
的TBHQ,而后分别用10,20,30,50mL的乙腈萃取
一次。测定结果的回收率见图1,图中4条线分别代表4种乙腈体积下,提取液正己烷的体积和回收,卒的关系。
万
方数据图1提取溶剂和革取溶剂的崩壁对回收率的影响
由上图可以看出,分别用10mL的正己烷和乙腈所得到的同收率较低;分别用20mL的正己烷和乙腈所得到的回收率则达到了94.7%。2.1.4乙腈溶剂提取时间对回收率的影响
在加标样品中加入20mL乙腈分别振荡提取一定时间后,测定同收率,束研究振荡提取时间与回收率的关系,得到图2。
图2提取时问与回收牢的关系
从图2可以看出,溶剂提取时间从5min到8rain,
回收率迅速上升,到10rain左右几乎达到回收率的最大值;但是10min以后,随着时间的延长,回收率基本
没有变化,甚至在30rain以后还会有所下降,这可能是样品中的TBHQ被空气中的O:氧化的缘故。因此,我们将溶剂的振荡提取时间定在1Omin。2.2HPLC流动相的选择2.2.1.流动相PH值的影响
文献资料【5。61多采用乙腈:甲醇:5%乙酸为2:2:6(V:V:V)峰形较好,但是由于其pH值偏低,(pH2—3),对多数的色谱柱都有所伤害,为了避其害,并且仍然用乙酸调整流动相的极性,我们试验用两种流动相对分离效果和对峰形的影响,发现两者并没有明显的差别。说明1.5%的乙酸浓度已经具
有较好的作用,并且pH值对一般C18液相色谱柱都
没有伤害(pH4左右)。
2.2.2.流动相中乙腈和乙酸不同比例对分析的影响
我们通过试验,分析不同比例下保留时间、柱压、
总分析时间的关系,发现乙腈比例越多,保留n寸问、柱压、总分析时间越小,但是,保留时间小,杂质峰干扰也
越多,分离效果差。考虑到缩短样品分析时间,提高工
现代科学仪器
・60・
ModemScientificInstruments
作效率,虽然40:60时柱压较高,我们还是选择这一
比例,既保证分离效果,将TBHQ目标峰控制在10rain
左右出峰,并且附近杂质干扰峰较少。我们将流动相
比例(乙腈:1.5%乙酸)定在4:6(V:V)比较理想。2.2.3用乙腈取代甲醇后分离效果
由于甲醇的水溶液在该比例下(4:6,V:V)粘
度接近最大值,从而造成柱压较大,我们去掉甲醇,完
全用乙腈和乙酸作为流动相,达到了预期效果(分离效果好、峰形好、柱压小)。2.2.4梯度洗脱
由于测试液中有较多极性杂质,我们用梯度洗脱的办法从色谱柱中加以去除,目标峰出现后,流动相变成乙腈100%,洗脱6min以上,在下一次进样前将
流动相比例恢复至乙腈+1.5%乙酸(4+6)以平衡色谱柱,避免了因杂质峰而干扰下一次的样品分析。综
上,我们将流动相条件确定在乙腈+1.5%(V/V)乙
酸(4+6),梯度洗脱程序。2.3检测器的选择
2.3.1
TBHQ发射光谱和荧光光谱的确定
以乙腈为溶剂,配制0.2mg/L的TBHQ标准溶
液,在仪器上扫描其紫外吸收,得到两个吸收峰
293nm和328nm,再以293nm和328nm作为激发波
长Ex:,分别扫描其荧光信号得出:最大激发波长:Ex
一293
nm,最大发射(荧光)波长:Em一332tim时,荧光信号最佳。
UV和FD对同一浓度的TBHQ响应信号的比较
uV和FD是液相色谱常用两种检测器,以下是uV和FD检测器对0.1Ixg/mL的TBHQ同时检测所
得到的谱图,FD对uV的S/N值为50倍到100倍。
所以我们选用FD。
图3紫外检测信号
图4荧光检测信号
我们从理论和实践两方面证实了FD比uV的优
万
方数据2008年10月
越性,所以我们选择FD作为该标准方法的检测器.
2.4标准回归方程
配制6种TBHQ标准溶液,浓度分别为0.1,o.5,
1.0,2.0,5.0、10.0斗g/mL,进样10I_rL,以峰面积A对浓度C(斗g/mL)进行回归分析。结果表明,线性关系
良好。线性相关系数0.9998。2.5加标回收实验
为了验证方法的准确性和可靠性,我们对测定方法
进行加标回收试验。我们选定五种不同样品,在其中加
入不同量的TBHQ标液,按照试验方法进行处理和测定,根据标准曲线的回归方程计算回收率,试验结果如表1。
表l不同样品加标回收试验结果
从以上结果可以看出,样品回收率在不同添加量,不同样品中其回收率不同,回收率在90.62%~98.30%之间,回收率总体情况满意。
2.6方法检出限的研究
对本标准适用范围内的各类食品进行样品处理,所得到的不含有TBHQ的处理液作为稀释液。
按照对倍稀释法用上述稀释液不断稀释0.5wg/mL标准使用液,过滤后进样检测。当TBHQ浓度被稀释到0.05Ixg/mL时,信噪比S/N=10。
因此,我们定义0.05pc/mE为方法的定量检测限。
图5方法的定量检测限图
本方法应用液相色谱一荧光检测器法(HPLC—FD)对食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)进行定量检测。样品经乙腈提取其中的TBHQ,经反相C18色谱柱分离后,用荧光检测器检测,以保留时间定性,面积mg/L~10mg/L。本方法灵敏度高,能简便、快速、准
确地检测食品中抗氧化剂TBr{Q。
(下接72页)
2.3.2
3结论
外标法定量。最低检出限0.05mg/L,线性范围0.1
现代科学仪器
.72.
ModemScientificInstruments
2008年10月
3
结论
采用离子色谱法测定饮料中的柠檬酸盐,并结合
仪器,2006,1:35—39
[3]吴飞燕,贾之慎,朱岩.离子色谱电导检测法测定酒中的有机酸和
无机阴离子,浙江大学学报:理学版.2006,33(3):312—315[4]CHENJ.Determinationof
chromatographyraphy
after
organic
acidsinindustrial
s咖by
waste
ion
固相萃取的样品前处理技术,简便、快速、灵敏度高,
且结果准确。
solid2phaseextraction[J].Journalof
Chromatog-
A,1996,(739):273—280
A
[5]SHARMAK,CLAUSSSof
A,MONin
GG
M,ethart
a1.Analysisand
参考文献
[1]牟世芬,刘克纳.离子色谱方法及应用[M].北京:化学工业出版
社.2000:6—7
[2]牟世芬,梁立娜.离子色谱的最新进展和几个热点应用.现代科学
quantification
organicacids
simulatedfordtankand
handfordtankwaste[J].JournalofChromatographyA,1998,(805):t01—107
[6]BAZIRAMAKENGAR,SIMARDRR,LEROUXGD.Determination
of
organic
acidsin
soilextractsby
ion
chromatography[J].Soil
Bid
Biochem,1995,27(3):349—356
DeterminationofCitrateinBeveragebySPE・—ionChromatography
Pin91.“uHebin2Renyonghon91
(1ShijiazhuangCenterforDiseasePreventionandControl,Sbijiazhuang05001l,China)
(2HebeiTeachersCollege。Shijiazhuang050021,China)
Abstract
ThemethodfordeterminationofcitrateinbeveragebytheSPE(SolidPh砧eExtraction)一ion
on
Hu
chromatographywa¥researchedthebasisofexperiment.1hesamplewasdilutedandpassedthroughtheDI-
at
a
ONEXOnGuardIIRPsamplepretreatmentcartridgebiccompound.thenwasfilteredby0.2trmfiltersand35mMKOHasisocraticmobilephase—HCcolumn.Thecalibration
cunre
at
a
flow
rate
of4mL/min
to
wipeofffatandotherhydropho—
was
determined
directly.Theseparationwasperformedwith
a
flow
rate
of1.0mL/minandaccomplishedwith
DionexIonPacASll
ofcitratewaslinear.Andthecorrelationcoemcientwas0.9998.Limitof
were
detectionforthemethodwas0.0361xg/mL.Therecoveries
96%~102%.The
precisionwas
lessthan1.
5%.The
methodwassimple.rapidand
accurate.
Keywords
SPE;ionchromatography;beverage;citrate
(上接60页)对于油脂含量较多的样品的前处理,用正己烷去除提取液中的油脂;而对于油脂类样品,
bilizationofedibleoil
halof
and
comparison
with
syntheticantioxidants,Jour-
Food
Engineering
2006,74.542—545
则用正己烷溶解,乙腈萃取后作为测试液。参考文献
[1]JiangL。,DelindaJ.,Marcusc.,L)mdaW.,CliveS.andJeffreyJ.
StabilizationofNrf2
by
[3]刘红河,陈卫,康莉,仲岳桐,陈春晓,气相色谱法同时测定食品中
3种抗氧化剂,现代预防医学,2006,33(12):2307—2309
[4]岳振峰,蓝芳,谢丽琪,气相色谱一质谱法测定XO酱中BHA、BHT
和TBHQ,中国粮油学报,2004,19(5):83—85
[5]郝鹏鹏,倪晋仁,孙卫玲,黄文,液相色谱/离子阱质谱法检测不同
食用植物油中的叔丁基对苯二酚(TBHQ),质谱学报,2005,vol-
ume26,issue4,221—227
tBHQConfemProtection
inHuman
against
Oxidative
Stress—InducedCellDeath
Sciences
NeuralStemCells,Toxicolgieal
.
[6]《进出El油脂中抗氧化剂的测定——液相色谱法》,标准号SN/
T1050—2002
2005,83,313—328
on
a
[2]D.Bera,D.Lahiri,A.Nag,Studies
natural
antioxidantfor
sta—
DeterminationofTertiaryButylhydroquinoneinFoodsbyHPLC
Lu
Yeju,ChengJing,JiangJunshu
Test
(NationalCenterforQualitySupervisionand
Abstract
ofAgricultural—AvocationProcessedFood,Hefoi,230051。China)
use
Inthisp印er,thepreprocessingmethodthatChinaallowsthe
studiedindetail.AHPLC—FDanalyticmethodwasdevelopedfordeterminationinfood.Theoptimizedconditionsofdeterminationwerestudied.The
ing
TBHQinfoodsampleswas
tea—butylhydroquinone(TBHQ)
of
sample
can
was
extractedbyacetonitrileaftercrush—
andpicking—upTBHQ.The
area
clearliquidwasseparatedbyC18anddeterminatedbyHPLC—FDandquantified
avoidtheinterferenceandhasbetterse—
detectionlimitsofthismethodare0.05mg/Landtherangeofdetermination
bytheratioofsamplebetweenstandardsamplearea.Thismethod
lectivitythantheexistingwas0.1mg/L一10
Keywords
methods.The
ms/L.卟ismethodissensitive,andcaneffectivelydetectTBHQaccuratelyinfood.
Food;Tert—butylhydroquinone(TBHQ);Determination
万方数据
高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量
作者:作者单位:刊名:英文刊名:年,卷(期):
卢业举, 程静, 蒋俊树, Lu Yeju, Cheng Jing, Jiang Junshu国家农副加工食品质量监督检验中心,合肥,230051现代科学仪器
MODERN SCIENTIFIC INSTRUMENTS2008(5)
参考文献(6条)
1.Jiang L;Delinda J;Marcus C;Lynda W,Clive S.Jeffrey J Stabilization of Nrf2 by tBHQ ConfersProtection against Oxidative Stress-Induced Call Death in Human Neural Stem Cells[外文期刊] 2005(2)2.SN/T 1050-2002.进出口油脂中抗氧化剂的测定--液相色谱法
3.郝鹏鹏;倪晋仁;孙卫玲;黄文 液相色谱/离子阱质谱法检测不同食用植物油中的叔丁基对苯二酚(TBHQ)[期刊论文]-质谱学报 2005(04)
4.岳振峰;蓝芳;谢丽琪 气相色谱-质谱法测定XO酱中BHA、BHT和TBHQ[期刊论文]-中国粮油学报 2004(05)5.刘红河;陈卫;康莉;仲岳桐,陈春晓 气相色谱法同时测定食品中3种抗氧化剂[期刊论文]-现代预防医学 2006(12)6.D.Bera;D.Lahiri;A.Nag Studies on a natural antioxidant for stabilization of edible oil andcomparison with synthetic antioxidants[外文期刊] 2006(4)
本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_xdkxyq200805019.aspx
现代科学仪器
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2008年10月
高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量
、
卢业举程静蒋俊树
(国家农副加工食品质量监督检验中心合肥230051)
E—mail:luyeju998@sina.eonl
摘要本文对我国允许使用TBHQ的食品样品的前处理方法进行详细研究,优化了样品处理及分析条件,建立了液相色谱一荧光检测器法(HPLC—FD)对食品中TBHQ进行定量检测的方法:样品经乙腈提取其中的TBHQ,经反相C18色谱柱分离后,用荧光检测器检测,以保留时间定性,面积外标法定量。最低检出限0.05mg/L,线性范围0.1
ms/L一10
ms/L。本方法灵敏度高,能简便、快速、准确地检测食品中抗氧化剂TBttQ。
关键词食品;叔丁基对苯二酚(TBHQ);检测中图分类号0657.7+2
虽然TBHQ的安全性已通过了联合国粮农组织
和世界卫生组织(FAO/WHO)评价…,但是,有些国
涡混合器,振荡器,微孔过滤器:孑L径0.451xm,有机溶
剂型滤膜。1.2试验方法1.2.1色谱条件
家不允许食品中含有TBHQ,如欧盟和日本。而美国
早在1972年就批准使用TBHQ,目前已有30多个国家和地区允许在食用油及油炸食品中使用TBHQ旧J。
色谱柱:美国安捷伦公司生产的C18柱(4.6.mm
×250
我同于1991年批准使用,食品添加剂使用卫生
标准GB2760最大使用限量为200mg/kg,允许在食用
mm,59m)。
流动相:A溶剂:乙腈,B溶剂:1.5%乙酸。线形梯度洗脱:0—10.Omin,A溶剂:B溶剂=
40:60;11.0—18.0
油脂、油炸食品、饼干等9种食品中使用TBHQ。
目前,国内外的一些高校及检疫检测机构对抗氧化剂的检测已经采取了一些措施和方法。主要有气
rain,A溶剂:B溶剂=100:0;
19.0~22.0min,A溶剂:B溶剂=40:60。
流速:1.0mL/min。检测波长:激发波长:293nm,发射波长:332nm。进样量:lOlL。1.2.2标准溶液配制
相色谱法∞J,气相色谱一质谱联用法HJ,高效液相色
谱法帕J,液相色谱一质谱联用法”1等。
由于气相色谱法样品处理繁琐,质谱法的质谱检测器的普及率不是很高,液相色谱法的多数研究者使用的紫外检测器的灵敏度较低怕J,本方法结合液相色谱法的样品处理简单,荧光检测器的高灵敏度的优
点,减轻了检测人员的劳动强度,提高了检测灵敏度。
1)叔丁基对苯二酚(TBHQ)标准储备液:准确称
取100mgTBHQ.加饱和乙腈溶解定容至lOOmL。TB—
HQ含量1mg/mL,作为贮备液。
2)TBHQ标准使用溶液:移取1mLTBHQ的储备液,加饱和乙腈定容至100mL,分别移取1,5,10,20,50raL该TBHQ溶液,放人lOOmL容量瓶,加饱和乙腈
1
验部分
至刻度,制成TBHQ含量分别为0.1,0.5,1,2,5ixg/
1.1主要仪器与试剂
实验用水均为高纯水;叔丁基对苯二酚(TBHQ)标准品:(Dr.EhrensterferGmbH)纯度:98%。冰乙酸:分析纯。L一抗坏血酸棕榈酸酯:分析纯。正己烷:分析纯。乙腈:色谱纯及分析纯。饱和乙腈:将乙腈和正己烷混合,在分液漏斗中充分振摇。静置分
mL的TBHQ标准溶液,用于制定标准曲线。1.2.3样品前处理
称取混合均匀的样品2.59(食用油脂样品109)
(精确至0.0019),置于lOOmL具塞锥形瓶中,用20mL饱和乙腈振荡提取5min,再加入20mL正己烷继续振荡5min,过滤到分液漏斗中,静置分层后,收
集下层乙腈层;再向样品残渣中加入20mL正己烷振荡提取lOmin,再过滤到分液漏斗中,加入20raL乙腈,振摇lmin,静置分层,收集合并乙腈层定容至50raL容
层,收集下层乙腈液,于1L该溶液中溶解100mg/L一抗坏血酸棕榈酸酯。该溶液称作“饱和乙腈”。日本岛津LC一2010A高效液相色谱仪附荧光检测器,漩
收稿日期:2008-08—14
作者简介:卢业举,男(1967一),研究生,研究方向:食品、农产品品质分析。
万方数据
2008年第5期
卢、业举等:高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量一——
:59:
量瓶中。经0.45Ixm滤膜过滤作为测试液。1.2.4定量方法(外标法)
根据样品不同类型,用不同的样品处理方法进行样品处理,取系列标准溶液和样品处理液各10恤L,进行高效液相色谱分析,以标准溶液峰的保留时间为依据进行定性,以标准溶液浓度对峰面积制作校正曲线,对样品进行定量。1・2・5结果计算
食品中TBHQ的含量按照一F式i-I-%:
X=1000CVl/m
式中:
x——被测食品中TBItQ含量,g/kg;c——样品溶液中TBHQ浓度,I山g/mL;y一一乙腈溶液最终定容的总体积,mL;m——称取的样品质量,g。2果与讨论
2.1样品前处理方法的选择2.1.1样品提取溶剂的选择
一般食品中TBHQ的样品处理多采用有机溶剂(如乙腈、甲醇、乙醇、异丙醇等)提取,然后用与前一种有机溶剂互不相溶的另外一种有机溶剂(正己烷、环己烷等)去除提取液中的油脂的方法。根据溶剂的极性:乙腈>甲醇>乙醇>异丙醇>丙酮>乙酸乙酯>环己烷>正己烷,可见乙腈和正己烷两者极性差别最大,可分别作为提取和去脂两种溶剂。2.1.2萃取次数对回收率的影响
通过试验发现TBHQ在乙腈和正己烷中的分配比大概在97:3左右,也就是说经过一次液液萃取,原来在正己烷中的TBHQ还残留3%;那么
再经过第2次液液萃取,正己烷中TBHQ还残留
3%半3%,即0.09%,可以忽略不计。所以,在样品提取工作中,我们用20mL正己烷溶解、提取样
品中的TBHQ,再分别用20mL乙腈苇取2次,合并乙腈萃取液即可。
2.1.3提取溶剂和萃取溶剂的用量(一次萃取)对回收率的影响
分别用10,20,30,50mL的正己烷提取样品中
的TBHQ,而后分别用10,20,30,50mL的乙腈萃取
一次。测定结果的回收率见图1,图中4条线分别代表4种乙腈体积下,提取液正己烷的体积和回收,卒的关系。
万
方数据图1提取溶剂和革取溶剂的崩壁对回收率的影响
由上图可以看出,分别用10mL的正己烷和乙腈所得到的同收率较低;分别用20mL的正己烷和乙腈所得到的回收率则达到了94.7%。2.1.4乙腈溶剂提取时间对回收率的影响
在加标样品中加入20mL乙腈分别振荡提取一定时间后,测定同收率,束研究振荡提取时间与回收率的关系,得到图2。
图2提取时问与回收牢的关系
从图2可以看出,溶剂提取时间从5min到8rain,
回收率迅速上升,到10rain左右几乎达到回收率的最大值;但是10min以后,随着时间的延长,回收率基本
没有变化,甚至在30rain以后还会有所下降,这可能是样品中的TBHQ被空气中的O:氧化的缘故。因此,我们将溶剂的振荡提取时间定在1Omin。2.2HPLC流动相的选择2.2.1.流动相PH值的影响
文献资料【5。61多采用乙腈:甲醇:5%乙酸为2:2:6(V:V:V)峰形较好,但是由于其pH值偏低,(pH2—3),对多数的色谱柱都有所伤害,为了避其害,并且仍然用乙酸调整流动相的极性,我们试验用两种流动相对分离效果和对峰形的影响,发现两者并没有明显的差别。说明1.5%的乙酸浓度已经具
有较好的作用,并且pH值对一般C18液相色谱柱都
没有伤害(pH4左右)。
2.2.2.流动相中乙腈和乙酸不同比例对分析的影响
我们通过试验,分析不同比例下保留时间、柱压、
总分析时间的关系,发现乙腈比例越多,保留n寸问、柱压、总分析时间越小,但是,保留时间小,杂质峰干扰也
越多,分离效果差。考虑到缩短样品分析时间,提高工
现代科学仪器
・60・
ModemScientificInstruments
作效率,虽然40:60时柱压较高,我们还是选择这一
比例,既保证分离效果,将TBHQ目标峰控制在10rain
左右出峰,并且附近杂质干扰峰较少。我们将流动相
比例(乙腈:1.5%乙酸)定在4:6(V:V)比较理想。2.2.3用乙腈取代甲醇后分离效果
由于甲醇的水溶液在该比例下(4:6,V:V)粘
度接近最大值,从而造成柱压较大,我们去掉甲醇,完
全用乙腈和乙酸作为流动相,达到了预期效果(分离效果好、峰形好、柱压小)。2.2.4梯度洗脱
由于测试液中有较多极性杂质,我们用梯度洗脱的办法从色谱柱中加以去除,目标峰出现后,流动相变成乙腈100%,洗脱6min以上,在下一次进样前将
流动相比例恢复至乙腈+1.5%乙酸(4+6)以平衡色谱柱,避免了因杂质峰而干扰下一次的样品分析。综
上,我们将流动相条件确定在乙腈+1.5%(V/V)乙
酸(4+6),梯度洗脱程序。2.3检测器的选择
2.3.1
TBHQ发射光谱和荧光光谱的确定
以乙腈为溶剂,配制0.2mg/L的TBHQ标准溶
液,在仪器上扫描其紫外吸收,得到两个吸收峰
293nm和328nm,再以293nm和328nm作为激发波
长Ex:,分别扫描其荧光信号得出:最大激发波长:Ex
一293
nm,最大发射(荧光)波长:Em一332tim时,荧光信号最佳。
UV和FD对同一浓度的TBHQ响应信号的比较
uV和FD是液相色谱常用两种检测器,以下是uV和FD检测器对0.1Ixg/mL的TBHQ同时检测所
得到的谱图,FD对uV的S/N值为50倍到100倍。
所以我们选用FD。
图3紫外检测信号
图4荧光检测信号
我们从理论和实践两方面证实了FD比uV的优
万
方数据2008年10月
越性,所以我们选择FD作为该标准方法的检测器.
2.4标准回归方程
配制6种TBHQ标准溶液,浓度分别为0.1,o.5,
1.0,2.0,5.0、10.0斗g/mL,进样10I_rL,以峰面积A对浓度C(斗g/mL)进行回归分析。结果表明,线性关系
良好。线性相关系数0.9998。2.5加标回收实验
为了验证方法的准确性和可靠性,我们对测定方法
进行加标回收试验。我们选定五种不同样品,在其中加
入不同量的TBHQ标液,按照试验方法进行处理和测定,根据标准曲线的回归方程计算回收率,试验结果如表1。
表l不同样品加标回收试验结果
从以上结果可以看出,样品回收率在不同添加量,不同样品中其回收率不同,回收率在90.62%~98.30%之间,回收率总体情况满意。
2.6方法检出限的研究
对本标准适用范围内的各类食品进行样品处理,所得到的不含有TBHQ的处理液作为稀释液。
按照对倍稀释法用上述稀释液不断稀释0.5wg/mL标准使用液,过滤后进样检测。当TBHQ浓度被稀释到0.05Ixg/mL时,信噪比S/N=10。
因此,我们定义0.05pc/mE为方法的定量检测限。
图5方法的定量检测限图
本方法应用液相色谱一荧光检测器法(HPLC—FD)对食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)进行定量检测。样品经乙腈提取其中的TBHQ,经反相C18色谱柱分离后,用荧光检测器检测,以保留时间定性,面积mg/L~10mg/L。本方法灵敏度高,能简便、快速、准
确地检测食品中抗氧化剂TBr{Q。
(下接72页)
2.3.2
3结论
外标法定量。最低检出限0.05mg/L,线性范围0.1
现代科学仪器
.72.
ModemScientificInstruments
2008年10月
3
结论
采用离子色谱法测定饮料中的柠檬酸盐,并结合
仪器,2006,1:35—39
[3]吴飞燕,贾之慎,朱岩.离子色谱电导检测法测定酒中的有机酸和
无机阴离子,浙江大学学报:理学版.2006,33(3):312—315[4]CHENJ.Determinationof
chromatographyraphy
after
organic
acidsinindustrial
s咖by
waste
ion
固相萃取的样品前处理技术,简便、快速、灵敏度高,
且结果准确。
solid2phaseextraction[J].Journalof
Chromatog-
A,1996,(739):273—280
A
[5]SHARMAK,CLAUSSSof
A,MONin
GG
M,ethart
a1.Analysisand
参考文献
[1]牟世芬,刘克纳.离子色谱方法及应用[M].北京:化学工业出版
社.2000:6—7
[2]牟世芬,梁立娜.离子色谱的最新进展和几个热点应用.现代科学
quantification
organicacids
simulatedfordtankand
handfordtankwaste[J].JournalofChromatographyA,1998,(805):t01—107
[6]BAZIRAMAKENGAR,SIMARDRR,LEROUXGD.Determination
of
organic
acidsin
soilextractsby
ion
chromatography[J].Soil
Bid
Biochem,1995,27(3):349—356
DeterminationofCitrateinBeveragebySPE・—ionChromatography
Pin91.“uHebin2Renyonghon91
(1ShijiazhuangCenterforDiseasePreventionandControl,Sbijiazhuang05001l,China)
(2HebeiTeachersCollege。Shijiazhuang050021,China)
Abstract
ThemethodfordeterminationofcitrateinbeveragebytheSPE(SolidPh砧eExtraction)一ion
on
Hu
chromatographywa¥researchedthebasisofexperiment.1hesamplewasdilutedandpassedthroughtheDI-
at
a
ONEXOnGuardIIRPsamplepretreatmentcartridgebiccompound.thenwasfilteredby0.2trmfiltersand35mMKOHasisocraticmobilephase—HCcolumn.Thecalibration
cunre
at
a
flow
rate
of4mL/min
to
wipeofffatandotherhydropho—
was
determined
directly.Theseparationwasperformedwith
a
flow
rate
of1.0mL/minandaccomplishedwith
DionexIonPacASll
ofcitratewaslinear.Andthecorrelationcoemcientwas0.9998.Limitof
were
detectionforthemethodwas0.0361xg/mL.Therecoveries
96%~102%.The
precisionwas
lessthan1.
5%.The
methodwassimple.rapidand
accurate.
Keywords
SPE;ionchromatography;beverage;citrate
(上接60页)对于油脂含量较多的样品的前处理,用正己烷去除提取液中的油脂;而对于油脂类样品,
bilizationofedibleoil
halof
and
comparison
with
syntheticantioxidants,Jour-
Food
Engineering
2006,74.542—545
则用正己烷溶解,乙腈萃取后作为测试液。参考文献
[1]JiangL。,DelindaJ.,Marcusc.,L)mdaW.,CliveS.andJeffreyJ.
StabilizationofNrf2
by
[3]刘红河,陈卫,康莉,仲岳桐,陈春晓,气相色谱法同时测定食品中
3种抗氧化剂,现代预防医学,2006,33(12):2307—2309
[4]岳振峰,蓝芳,谢丽琪,气相色谱一质谱法测定XO酱中BHA、BHT
和TBHQ,中国粮油学报,2004,19(5):83—85
[5]郝鹏鹏,倪晋仁,孙卫玲,黄文,液相色谱/离子阱质谱法检测不同
食用植物油中的叔丁基对苯二酚(TBHQ),质谱学报,2005,vol-
ume26,issue4,221—227
tBHQConfemProtection
inHuman
against
Oxidative
Stress—InducedCellDeath
Sciences
NeuralStemCells,Toxicolgieal
.
[6]《进出El油脂中抗氧化剂的测定——液相色谱法》,标准号SN/
T1050—2002
2005,83,313—328
on
a
[2]D.Bera,D.Lahiri,A.Nag,Studies
natural
antioxidantfor
sta—
DeterminationofTertiaryButylhydroquinoneinFoodsbyHPLC
Lu
Yeju,ChengJing,JiangJunshu
Test
(NationalCenterforQualitySupervisionand
Abstract
ofAgricultural—AvocationProcessedFood,Hefoi,230051。China)
use
Inthisp印er,thepreprocessingmethodthatChinaallowsthe
studiedindetail.AHPLC—FDanalyticmethodwasdevelopedfordeterminationinfood.Theoptimizedconditionsofdeterminationwerestudied.The
ing
TBHQinfoodsampleswas
tea—butylhydroquinone(TBHQ)
of
sample
can
was
extractedbyacetonitrileaftercrush—
andpicking—upTBHQ.The
area
clearliquidwasseparatedbyC18anddeterminatedbyHPLC—FDandquantified
avoidtheinterferenceandhasbetterse—
detectionlimitsofthismethodare0.05mg/Landtherangeofdetermination
bytheratioofsamplebetweenstandardsamplearea.Thismethod
lectivitythantheexistingwas0.1mg/L一10
Keywords
methods.The
ms/L.卟ismethodissensitive,andcaneffectivelydetectTBHQaccuratelyinfood.
Food;Tert—butylhydroquinone(TBHQ);Determination
万方数据
高效液相色谱法测定食品中叔丁基对苯二酚(TBHQ)含量
作者:作者单位:刊名:英文刊名:年,卷(期):
卢业举, 程静, 蒋俊树, Lu Yeju, Cheng Jing, Jiang Junshu国家农副加工食品质量监督检验中心,合肥,230051现代科学仪器
MODERN SCIENTIFIC INSTRUMENTS2008(5)
参考文献(6条)
1.Jiang L;Delinda J;Marcus C;Lynda W,Clive S.Jeffrey J Stabilization of Nrf2 by tBHQ ConfersProtection against Oxidative Stress-Induced Call Death in Human Neural Stem Cells[外文期刊] 2005(2)2.SN/T 1050-2002.进出口油脂中抗氧化剂的测定--液相色谱法
3.郝鹏鹏;倪晋仁;孙卫玲;黄文 液相色谱/离子阱质谱法检测不同食用植物油中的叔丁基对苯二酚(TBHQ)[期刊论文]-质谱学报 2005(04)
4.岳振峰;蓝芳;谢丽琪 气相色谱-质谱法测定XO酱中BHA、BHT和TBHQ[期刊论文]-中国粮油学报 2004(05)5.刘红河;陈卫;康莉;仲岳桐,陈春晓 气相色谱法同时测定食品中3种抗氧化剂[期刊论文]-现代预防医学 2006(12)6.D.Bera;D.Lahiri;A.Nag Studies on a natural antioxidant for stabilization of edible oil andcomparison with synthetic antioxidants[外文期刊] 2006(4)
本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_xdkxyq200805019.aspx