广西科学GuangxiSciences1998,5(3):173～176
花生蛋白脂肪乳状液中蛋白质的聚沉作用3
PeanutProteinCoagulationinPeanut
ProteinfatEmulsion
陈元发 李熠3
ChenYuanfa Li
3
黄天冠3
33
Yi HuangTianguan
(广西师范大学 桂林市育才路3号 541004)
(GuangxiNormalUniversity,3Yucailu,Guilin,Guangxi,541004)
摘要 花生蛋白脂肪乳状液中花生蛋白质的聚沉作用,是发生在一个pH值区间。614时,聚沉pH值为3117～6109;pH值=8～10时为411～6137,在花生蛋白脂肪乳状液中通入CO2时,可使花生蛋白质聚沉。关键词 花生蛋白质 乳状液 聚沉中图法分类号 S5651201
Abstract2fatemulsionarisesinaspecificrangeofpHvalues.When=4pHvaluewas3117～6109;extractantpH=8～10,coagulationpHvalue411～Peanutproteincoagulationwasgettingmorecompletealongwiththeemulsionkeepingstaticlonger,butcoagulationpHvaluedidnotchange.Peanutproteinsarosecoagulation,whenaddingCO2topeanutprotein2fatemulsion.
Keywords peanutproteins,emulsion,coagulation
花生(Arachishypogaea)是一种富含蛋白质和脂肪的油料作物。当将花生果去壳、脱红衣,研磨,除去不乳化物(淀粉、纤维素、半纤维素等)而得一种白色乳状液,内含少许无机盐(K+、Na+),有机物(糖类、维生素等)外,主要含花生蛋白和花生脂肪,将这种白色乳状液叫做花生蛋白脂肪乳状液。这种乳状液中的脂肪,系呈微小球状分布[1],脂肪球表面有一层由花生卵磷脂及花生蛋白质构成的膜包裹着,在一定pH值下具有一定的ζ2电位[2],因而这种乳脂球在乳状液中,具有一定的动力学稳定性。但由于花生脂肪的密度小于乳状液介质水的密度,因此乳脂球有一种上浮的趋势,使乳状液呈现热力学的不稳定性。静置,乳脂球可上浮溶液表面,而形成一层白色的乳脂肪层。用离心分离的方法,除去乳脂球,得到仍然是白色的花生蛋白乳状液。乳状液中的花生蛋白质,在电子显微镜下,可观察到它是呈微粒状存在
1997211203收稿。
的,在一定pH值下有一定的ζ2电位,且呈现两性状态[3]。 花生蛋白脂肪乳状液中的蛋白质聚沉作用,显然与花生蛋白质及脂肪球的ζ2电位及等电点有关,但上述文献所测得的数据,均系在花生蛋白与脂肪球于分离状态下分别测定的,而在生产实际中,花生蛋白和脂肪球系共存于同一个体系中的。本研究系在一系列pH值的缓冲溶液中加入一定量花生蛋白脂肪乳状液,观测乳状液的聚沉现象;在一定量的乳状液中,间断地加入稀盐酸,测定各时期的pH值,并与计算理论值对比作图,以观测pH值曲线变化规律;在乳状液中通入CO2气体,观测pH值变化和聚沉;从而研究花生蛋白脂肪乳状液中蛋白质的聚沉作用。
1 实验材料与方法
111 材料和设备
11111 花生品种:中花117号,阳朔县产,含花生蛋
3国家自然科学基金资助课题。
33中山中学,桂林,541001(ZhongshanMiddleSchool,Guilin,Guangxi,
541001).
333桂林地区教育学院,桂林,541001(GuilinPrefectureEducational
College,Guilin,Guangxi,541001).
白质2818%,脂肪4415%,以及其它品种和不同产地。11112 主要设备:VIRTIS匀浆器(美国产),酸度计PHSPI(上海雷磁仪器厂),恒温水槽(精
)。度:±015℃
173
广西科学 1998年8月 第5卷第3期
112 花生蛋白脂肪乳状液的制备
取花生仁4g,置于40℃水中浸泡1h,去红衣,加水或用稀NaOH溶液调节pH值的水溶液100mL,以5000r/min的转速捣碎、匀浆5min,在3000r/min的转速下离心5min,用倾滤法去掉沉淀,
本研究采用上述制备花生蛋白脂肪乳状液的方法,用浸取液pH值810制取。精确量取50mL,乳状液pH值6180,滴定时,最初几点用01002mol/L,以后用0102mol/L盐酸,用量前半段每次1mL,后半段每次2mL,搅匀,稍静置,用酸度
再进行匀浆,得花生蛋白脂肪乳状液。113 花生蛋白脂肪乳状液在系列pH值缓冲溶液中的聚沉11311 系列pH值缓冲溶液的配制根据文献[4]介绍的氢氧化纳醋酸磷酸硼酸缓冲溶液配制方法配制一系列缓冲溶液。11312 实验观测方法
在若干支带塞的试管中,分别注入各种缓冲溶液30mL,加塞置于25℃恒温水槽中,恒温20min,然后在各试管中加入1mL已经恒温25℃的
计测定乳状液的pH值,该值称为实测pH值;而应
用计算方法,即已知滴定用的盐酸浓度,每次用量的累加值和乳状液的总体积(含加入的盐酸的体积),不考虑盐酸和乳状液中游离碱和花生蛋白质基团的作用,计算出乳状液盐酸的浓度,换算为pH值,此值称为理论值,然后以理论pH值对实测pH值作图(图1)。
花生蛋白脂肪乳状液,摇匀,温,定时观测聚沉现象。11313 (NH2),也具有酸基()的两性物质,在高pH值的条件下,用盐酸进行滴定时,
+
COO-和
H2
先后将与H作用,在乳状液中形成的pH值,将产生一定的规律变化。
图1 花生蛋白脂肪乳状液的盐酸滴定曲线
Fig11 Hydrochloricacidtitrationcurveofpeanut
protein2fatemulsion
表1 花生蛋白质在系列pH值缓冲溶液中的聚沉现象(25℃,静置3h)
Table1 PeanutproteincoagulationinaseriesofpHbuffersolutions(25℃,keepstaticfor3h)
序号No1
12345678
浸取液pH值
ExtractantpHvalue[***********]01010910
乳状液pH值
EmulsionpHvalue[***********]810810
2156--------3129
3178++++++----4110++++++++++++
4135++++++++++++++++
聚沉现象Coagulation
4156++++++++++++++++++++++++
5133++++++++++++++++
5172+++++++++++++++
6109-+(±)+++++
6137----(±)
(±)(±)(±)
6159--------6180--------
±
±
++----
(±):絮状沉淀,+:沉淀,++:较多沉淀,+++:大量沉淀,上液澄清,-:保持乳状液状态。(±):Flocculentprecipitation,+:Precipitation,++:Moreprecipitation,+++:Massiveprecipitation,supernatantclarification.-:Keepemulsion.
表2 花生蛋白质在系列pH值缓冲溶液中的聚沉随时间变化(25℃)
Table2 PeanutproteincoagulationchangeswithtimeinaseriesofpHbuffersolutions(25℃)
序号No1
1
浸取液pH值乳状液pHExtractant值Emulsion
pHvalue614
pHvalue612
观察时间
Observation
times(h)
3648
2156------3129+++++---3178+++++++---4110++++++++++
聚沉现象Coagulation
4135++++++++++
4156++++++++++++++++++
5133++++++++++++++++++
5172++++++++++++++
6109(±)(±)++++++
6137---(±)++++
6159------
21083648
(±):絮状沉淀,+:沉淀,++:较多沉淀,+++:大量沉淀,上液澄清,-:保持乳状液状态。(±):Flocculentprecipitation,+:Precipitation,++:Moreprecipitation,+++:Massiveprecipitation,supernatantclarification.-:Keepemulsion.
174GuangxiSciences,Vol15No13,August1998
11314 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用试验产的CO2,所获结果基本一致。在地下自来水和花生乳状液中通入CO2,所得pH值要比蒸馏水通CO2的偏高,而其两者基本一致。其偏高原因,可能是自来水中含有盐类,乳状液中含有花生蛋白质等,通入CO2后形成碳酸盐和碳酸氢盐,产生水解所致。
本实验观察CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用。方法是用钢瓶装市售的CO2(有随仪器进口的、国产的两种)直接通入乳状液中,用酸度计测定pH值,直到pH值不再变化,记录pH值,并观察聚沉现象。为了比较,同时用蒸馏水、自来水作对比试验。
3 讨论
在表1,表2可以看到,花生蛋白脂肪乳状液中花生蛋白质的聚沉作用,不是产生在某个特定的pH值点,而是产生在一个连续的pH值区间。这个聚沉规律,在已往的文献中未见报道。我们在测定花生乳
脂球和花生蛋白质微粒的ζ2电位的研究[2,3]中,也曾ζ=0时,pH值点上,,[5]来解释。该,将相反电荷的溶胶互相混合,也会发生聚沉,与电解质的聚沉作用不同之处在于两种溶胶用量应恰能使其所带的总电荷量相同时,才会完全聚沉,否则不可能完全聚沉,甚至不聚沉。从花生蛋白质的聚沉作用系产生在一个特定的pH值区间和胶体互相聚沉作用的理论,可以推断花生蛋白脂肪乳状液中,最少含两种花生蛋白质,在这个聚沉作用的pH值区间的两个端点,就分别是它们的等电点。当pH值处于这两个等电点之间时,则这时的两个花生蛋白质将带相反电荷,而将产生聚沉。
我们曾将花生蛋白乳状液进行醋酸纤维薄膜电泳研究[6],结果在电泳膜上显出3条谱带,这说明最少有3种花生蛋白质;应用等电聚焦电泳时,结果发现有11条谱带,其中有6条是主要的,它们的等电点分别为413,415,511,514,615,617,而不是像一些学者所说的是单一的等电点,如有人说是416[7],有人说是415[8],也有说是415～510[9]。在花生蛋白乳状液中,因有多种类的花生蛋白质存在,这就形成了聚沉产生一个pH值区间的原因。
由表1可见,花生蛋白在pH值4156～5172范围沉淀最多,而向pH值两边扩展时,沉淀量逐渐减少直至与没有发生聚沉为分界,这里有两个分界,即pH值上限与下限分界,这种分界因浸取液pH值不同而有所不同。当用蒸馏水(pH值614)浸制的乳状液(pH值612),聚沉的上限的pH值6109,下限pH值3129,而用pH值8～10作浸取液,浸制的乳状液pH值710～810
2 结果
花生蛋白脂肪乳状液在系列pH值缓冲溶液中,恒温、静置3h,聚沉现象观测结果列于表1。
由表1可见,静置3h,沉淀最多的是在pH值4135～5172之间,而聚沉pH值的上限和下限值,
是随浸取液的pH值不同而有不同。浸取液用蒸馏水,pH值614,乳状液pH值612时,在系列缓冲溶液中,于pH值3129处已有少许沉淀,限为pH值6109;而浸取液pH值,得的乳状液pH值7～值下限为pH值(阳朔汕油523),而用不同pH值的浸取液的花生蛋白脂肪乳状液,在不同pH值的缓冲溶液中的聚沉随时间的变化情况见表2。由表2可见,因浸取液pH值不同,聚沉pH值
的上限和下限不同外,而随着静置时间的不同,沉淀的量发生很大变化。静置48h后,一些原沉淀较少的,也完全沉淀了(上层液澄清),而原来没有发生聚结和聚沉的,仍然没有产生聚沉现象。 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉结果见表3。
表3 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用(常压,22℃)
Table3 CO2coagulationfunctionforpeanutprotein2fatemul2sion(normalpressure,22℃)序号
No.1234
品名
Solution
溶液pH值
Solution
pHvalue[**************]0
通CO2后pH值
pHvalueafteraddingCO2
[**************]5
备注
Remark
一次蒸馏水Single
distilledwater
用国产CO2
DomesticCO2
一次蒸馏水Single
distilledwater
用进口CO2
ImportCO2
地下自来水
Groundtapwater
花生乳状液
Peanutemulsion
有沉淀
Precipitation
从实验可以看到,用pH值6180的蒸馏水,制得花生蛋白乳状液pH值6160,通入CO2至饱和(pH值不再发生变化)时pH值为5135,乳状液发生沉淀。当加入稀NaOH溶液至pH值710以上,沉淀复溶解。表3结果说明pH值计的测定值是可靠的,应用进口的和国
广西科学 1998年8月 第5卷第3期
时,聚沉的上限pH值6137,下限pH值4110。
175
表2表明聚沉作用沉淀量随时间而变化,延长时间可使之完全沉淀,但它们聚沉的上限和下限却是不变的。
在表1中,可看到,序号1～4聚沉值上限是6109,下限是3129,而序号5～8,上限为6137,下限为411。虽然在配制缓冲溶液的pH值的区间距离较大,但这差异是明显地存在,这是由于花生品种不同(在表1中序号不同,品种和种植地是不同的),还是浸取液的pH差异所造成的?!在表2中,是用同一种花生品种,而用不同pH值的浸取液,结果仍出现象表1一样的现象,由此可见造成聚沉pH值的上限不同的和下限的不同,是由于浸取液的pH值不同而引起的。 在文献[6],我们用等电聚焦电泳方法对花生蛋白乳状液进行分析,获得谱带11条,其中明显的6条,其等电点为413,414,511,514,615,617pH值614把等电点为615,61表1记录中,6109pH值8～10的浸取液,pH值为7～8,则上限为6137,可见是提高了花生蛋白质浸取率。这可能就是用不同pH值的浸取液,乳状液花生蛋白质的聚沉值上限不同的原因。这个发现,为了从花生中提高蛋白质浸取率,可提高浸取液的pH值。
用pH值8～10的浸取液,得到的乳状液pH值7～8,则上限为6137,但仍与等电点为615,617的花生蛋白质相对应的聚沉值不一致,当然这可能由于配制的缓冲溶液pH值间隔较大所起的误差,或由胶体聚沉作用理论所说的,两种胶体总电荷量不相等时,只能引起部分沉淀或完全不聚沉来解释。前者可用来解释615这一点,后者可用来解释617点。另在用pH值8～10为浸取液的,下限聚沉值pH值为411,而用pH值614的却为3129,它们相差甚远,如果仍用上述两点说法解释,似有点勉强,而且总觉得不确实,应用花生蛋白脂肪乳状液的盐酸滴定曲线可以得到聚沉pH值上限和下限值的判定。 在花生蛋白脂肪乳状液盐酸滴定的实测pH值与理论pH值对比曲线中,可以明显地看成是由AB,BC,CD,DF四条直线段组成,B、C、D3个拐点的相应的实测pH值为3125,4128,6140,这与表1、表2测定的,用pH值8～10,和pH值614浸取研磨制得的乳状液的聚沉作用的上限和下限值基本一致。这佐证了聚沉作用上限和下限值的存在。这似乎也证明
了,用稀盐酸滴定花生蛋白脂肪乳状液时,DF是中和乳状液中的游离碱,CD是中和花生蛋白分子中的羧基COO-,BC是中和NH2基,AB则是形成过剩的游离酸。AB、DF线段的斜率较大,CD次之,BC更次之。
4 小结
花生蛋白脂肪乳状液中的花生蛋白质的聚沉作用,系在一个pH值区间发生,但由于浸取液pH值不同,聚沉pH值区间的上限和下限值有所不同,用pH值614的蒸馏水浸磨得到的花生蛋白脂肪乳状液的pH值为612,聚沉pH值的上限和下限值为6106～3117;而浸取液pH值在9～10,pH值7～8时,则聚沉值41滴定p,ppH值,:3125,4128,6140,,在聚沉pH值区间,静置3h后观察,于pH值4156～5172区间沉淀最多,经长时间静置,则在聚沉pH值区间几乎全部产生完全沉淀,上层溶液澄清,但在聚沉pH值区间之外,原不发生聚沉的,依然不发生聚沉。在花生蛋白脂肪乳状液
),常压下,通CO2,则花生蛋白发生中,于常温(22℃
聚沉,当通入CO2达饱和时,溶液的pH值5135。
参考文献
1 张杏辉,陈全斌等,花生蛋白脂肪乳状液中脂肪球的大小
分布.广西师范大学学报(自然科学版),1994,12(3):59～
65.
2 陈全斌,黄天冠,陈元发等.花生乳脂球ζ2电位及其乳化膜
组成的研究.广西科学,1995,2(1):23～27.
3 黄天冠,陈元发等,花生蛋白微粒ζ2电位的测定.广西师范
大学学报(自然科学版),1995,3(3):53～56.
4 楼书聪.化学试剂配制手册,南京:江苏科学技术出版社,
1993.992.
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社,1990.1027.
6 韦一能,陈元发,陈全斌等.花生蛋白质的主要种类和等电
点研究,广西科学,1995,2(4):1～5.
7 CaterMetal..Aquecusextractionofoilseed1JAOCS,1974,
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8 LusasEW1Foodusesofpeanutprotein.JAOCS,1979,56:
425～430.
9 SubrahmanyanJetal..Integratedprocessingofpeanutfor
theseparationofmajorconstituents1JAmerOilChemSoc,1959,36:661
(责任编辑:蒋汉明 黎贞崇)
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GuangxiSciences,Vol15No13,August1998
广西科学GuangxiSciences1998,5(3):173～176
花生蛋白脂肪乳状液中蛋白质的聚沉作用3
PeanutProteinCoagulationinPeanut
ProteinfatEmulsion
陈元发 李熠3
ChenYuanfa Li
3
黄天冠3
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Yi HuangTianguan
(广西师范大学 桂林市育才路3号 541004)
(GuangxiNormalUniversity,3Yucailu,Guilin,Guangxi,541004)
摘要 花生蛋白脂肪乳状液中花生蛋白质的聚沉作用,是发生在一个pH值区间。614时,聚沉pH值为3117～6109;pH值=8～10时为411～6137,在花生蛋白脂肪乳状液中通入CO2时,可使花生蛋白质聚沉。关键词 花生蛋白质 乳状液 聚沉中图法分类号 S5651201
Abstract2fatemulsionarisesinaspecificrangeofpHvalues.When=4pHvaluewas3117～6109;extractantpH=8～10,coagulationpHvalue411～Peanutproteincoagulationwasgettingmorecompletealongwiththeemulsionkeepingstaticlonger,butcoagulationpHvaluedidnotchange.Peanutproteinsarosecoagulation,whenaddingCO2topeanutprotein2fatemulsion.
Keywords peanutproteins,emulsion,coagulation
花生(Arachishypogaea)是一种富含蛋白质和脂肪的油料作物。当将花生果去壳、脱红衣,研磨,除去不乳化物(淀粉、纤维素、半纤维素等)而得一种白色乳状液,内含少许无机盐(K+、Na+),有机物(糖类、维生素等)外,主要含花生蛋白和花生脂肪,将这种白色乳状液叫做花生蛋白脂肪乳状液。这种乳状液中的脂肪,系呈微小球状分布[1],脂肪球表面有一层由花生卵磷脂及花生蛋白质构成的膜包裹着,在一定pH值下具有一定的ζ2电位[2],因而这种乳脂球在乳状液中,具有一定的动力学稳定性。但由于花生脂肪的密度小于乳状液介质水的密度,因此乳脂球有一种上浮的趋势,使乳状液呈现热力学的不稳定性。静置,乳脂球可上浮溶液表面,而形成一层白色的乳脂肪层。用离心分离的方法,除去乳脂球,得到仍然是白色的花生蛋白乳状液。乳状液中的花生蛋白质,在电子显微镜下,可观察到它是呈微粒状存在
1997211203收稿。
的,在一定pH值下有一定的ζ2电位,且呈现两性状态[3]。 花生蛋白脂肪乳状液中的蛋白质聚沉作用,显然与花生蛋白质及脂肪球的ζ2电位及等电点有关,但上述文献所测得的数据,均系在花生蛋白与脂肪球于分离状态下分别测定的,而在生产实际中,花生蛋白和脂肪球系共存于同一个体系中的。本研究系在一系列pH值的缓冲溶液中加入一定量花生蛋白脂肪乳状液,观测乳状液的聚沉现象;在一定量的乳状液中,间断地加入稀盐酸,测定各时期的pH值,并与计算理论值对比作图,以观测pH值曲线变化规律;在乳状液中通入CO2气体,观测pH值变化和聚沉;从而研究花生蛋白脂肪乳状液中蛋白质的聚沉作用。
1 实验材料与方法
111 材料和设备
11111 花生品种:中花117号,阳朔县产,含花生蛋
3国家自然科学基金资助课题。
33中山中学,桂林,541001(ZhongshanMiddleSchool,Guilin,Guangxi,
541001).
333桂林地区教育学院,桂林,541001(GuilinPrefectureEducational
College,Guilin,Guangxi,541001).
白质2818%,脂肪4415%,以及其它品种和不同产地。11112 主要设备:VIRTIS匀浆器(美国产),酸度计PHSPI(上海雷磁仪器厂),恒温水槽(精
)。度:±015℃
173
广西科学 1998年8月 第5卷第3期
112 花生蛋白脂肪乳状液的制备
取花生仁4g,置于40℃水中浸泡1h,去红衣,加水或用稀NaOH溶液调节pH值的水溶液100mL,以5000r/min的转速捣碎、匀浆5min,在3000r/min的转速下离心5min,用倾滤法去掉沉淀,
本研究采用上述制备花生蛋白脂肪乳状液的方法,用浸取液pH值810制取。精确量取50mL,乳状液pH值6180,滴定时,最初几点用01002mol/L,以后用0102mol/L盐酸,用量前半段每次1mL,后半段每次2mL,搅匀,稍静置,用酸度
再进行匀浆,得花生蛋白脂肪乳状液。113 花生蛋白脂肪乳状液在系列pH值缓冲溶液中的聚沉11311 系列pH值缓冲溶液的配制根据文献[4]介绍的氢氧化纳醋酸磷酸硼酸缓冲溶液配制方法配制一系列缓冲溶液。11312 实验观测方法
在若干支带塞的试管中,分别注入各种缓冲溶液30mL,加塞置于25℃恒温水槽中,恒温20min,然后在各试管中加入1mL已经恒温25℃的
计测定乳状液的pH值,该值称为实测pH值;而应
用计算方法,即已知滴定用的盐酸浓度,每次用量的累加值和乳状液的总体积(含加入的盐酸的体积),不考虑盐酸和乳状液中游离碱和花生蛋白质基团的作用,计算出乳状液盐酸的浓度,换算为pH值,此值称为理论值,然后以理论pH值对实测pH值作图(图1)。
花生蛋白脂肪乳状液,摇匀,温,定时观测聚沉现象。11313 (NH2),也具有酸基()的两性物质,在高pH值的条件下,用盐酸进行滴定时,
+
COO-和
H2
先后将与H作用,在乳状液中形成的pH值,将产生一定的规律变化。
图1 花生蛋白脂肪乳状液的盐酸滴定曲线
Fig11 Hydrochloricacidtitrationcurveofpeanut
protein2fatemulsion
表1 花生蛋白质在系列pH值缓冲溶液中的聚沉现象(25℃,静置3h)
Table1 PeanutproteincoagulationinaseriesofpHbuffersolutions(25℃,keepstaticfor3h)
序号No1
12345678
浸取液pH值
ExtractantpHvalue[***********]01010910
乳状液pH值
EmulsionpHvalue[***********]810810
2156--------3129
3178++++++----4110++++++++++++
4135++++++++++++++++
聚沉现象Coagulation
4156++++++++++++++++++++++++
5133++++++++++++++++
5172+++++++++++++++
6109-+(±)+++++
6137----(±)
(±)(±)(±)
6159--------6180--------
±
±
++----
(±):絮状沉淀,+:沉淀,++:较多沉淀,+++:大量沉淀,上液澄清,-:保持乳状液状态。(±):Flocculentprecipitation,+:Precipitation,++:Moreprecipitation,+++:Massiveprecipitation,supernatantclarification.-:Keepemulsion.
表2 花生蛋白质在系列pH值缓冲溶液中的聚沉随时间变化(25℃)
Table2 PeanutproteincoagulationchangeswithtimeinaseriesofpHbuffersolutions(25℃)
序号No1
1
浸取液pH值乳状液pHExtractant值Emulsion
pHvalue614
pHvalue612
观察时间
Observation
times(h)
3648
2156------3129+++++---3178+++++++---4110++++++++++
聚沉现象Coagulation
4135++++++++++
4156++++++++++++++++++
5133++++++++++++++++++
5172++++++++++++++
6109(±)(±)++++++
6137---(±)++++
6159------
21083648
(±):絮状沉淀,+:沉淀,++:较多沉淀,+++:大量沉淀,上液澄清,-:保持乳状液状态。(±):Flocculentprecipitation,+:Precipitation,++:Moreprecipitation,+++:Massiveprecipitation,supernatantclarification.-:Keepemulsion.
174GuangxiSciences,Vol15No13,August1998
11314 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用试验产的CO2,所获结果基本一致。在地下自来水和花生乳状液中通入CO2,所得pH值要比蒸馏水通CO2的偏高,而其两者基本一致。其偏高原因,可能是自来水中含有盐类,乳状液中含有花生蛋白质等,通入CO2后形成碳酸盐和碳酸氢盐,产生水解所致。
本实验观察CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用。方法是用钢瓶装市售的CO2(有随仪器进口的、国产的两种)直接通入乳状液中,用酸度计测定pH值,直到pH值不再变化,记录pH值,并观察聚沉现象。为了比较,同时用蒸馏水、自来水作对比试验。
3 讨论
在表1,表2可以看到,花生蛋白脂肪乳状液中花生蛋白质的聚沉作用,不是产生在某个特定的pH值点,而是产生在一个连续的pH值区间。这个聚沉规律,在已往的文献中未见报道。我们在测定花生乳
脂球和花生蛋白质微粒的ζ2电位的研究[2,3]中,也曾ζ=0时,pH值点上,,[5]来解释。该,将相反电荷的溶胶互相混合,也会发生聚沉,与电解质的聚沉作用不同之处在于两种溶胶用量应恰能使其所带的总电荷量相同时,才会完全聚沉,否则不可能完全聚沉,甚至不聚沉。从花生蛋白质的聚沉作用系产生在一个特定的pH值区间和胶体互相聚沉作用的理论,可以推断花生蛋白脂肪乳状液中,最少含两种花生蛋白质,在这个聚沉作用的pH值区间的两个端点,就分别是它们的等电点。当pH值处于这两个等电点之间时,则这时的两个花生蛋白质将带相反电荷,而将产生聚沉。
我们曾将花生蛋白乳状液进行醋酸纤维薄膜电泳研究[6],结果在电泳膜上显出3条谱带,这说明最少有3种花生蛋白质;应用等电聚焦电泳时,结果发现有11条谱带,其中有6条是主要的,它们的等电点分别为413,415,511,514,615,617,而不是像一些学者所说的是单一的等电点,如有人说是416[7],有人说是415[8],也有说是415～510[9]。在花生蛋白乳状液中,因有多种类的花生蛋白质存在,这就形成了聚沉产生一个pH值区间的原因。
由表1可见,花生蛋白在pH值4156～5172范围沉淀最多,而向pH值两边扩展时,沉淀量逐渐减少直至与没有发生聚沉为分界,这里有两个分界,即pH值上限与下限分界,这种分界因浸取液pH值不同而有所不同。当用蒸馏水(pH值614)浸制的乳状液(pH值612),聚沉的上限的pH值6109,下限pH值3129,而用pH值8～10作浸取液,浸制的乳状液pH值710～810
2 结果
花生蛋白脂肪乳状液在系列pH值缓冲溶液中,恒温、静置3h,聚沉现象观测结果列于表1。
由表1可见,静置3h,沉淀最多的是在pH值4135～5172之间,而聚沉pH值的上限和下限值,
是随浸取液的pH值不同而有不同。浸取液用蒸馏水,pH值614,乳状液pH值612时,在系列缓冲溶液中,于pH值3129处已有少许沉淀,限为pH值6109;而浸取液pH值,得的乳状液pH值7～值下限为pH值(阳朔汕油523),而用不同pH值的浸取液的花生蛋白脂肪乳状液,在不同pH值的缓冲溶液中的聚沉随时间的变化情况见表2。由表2可见,因浸取液pH值不同,聚沉pH值
的上限和下限不同外,而随着静置时间的不同,沉淀的量发生很大变化。静置48h后,一些原沉淀较少的,也完全沉淀了(上层液澄清),而原来没有发生聚结和聚沉的,仍然没有产生聚沉现象。 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉结果见表3。
表3 CO2对花生蛋白脂肪乳状液的聚沉作用(常压,22℃)
Table3 CO2coagulationfunctionforpeanutprotein2fatemul2sion(normalpressure,22℃)序号
No.1234
品名
Solution
溶液pH值
Solution
pHvalue[**************]0
通CO2后pH值
pHvalueafteraddingCO2
[**************]5
备注
Remark
一次蒸馏水Single
distilledwater
用国产CO2
DomesticCO2
一次蒸馏水Single
distilledwater
用进口CO2
ImportCO2
地下自来水
Groundtapwater
花生乳状液
Peanutemulsion
有沉淀
Precipitation
从实验可以看到,用pH值6180的蒸馏水,制得花生蛋白乳状液pH值6160,通入CO2至饱和(pH值不再发生变化)时pH值为5135,乳状液发生沉淀。当加入稀NaOH溶液至pH值710以上,沉淀复溶解。表3结果说明pH值计的测定值是可靠的,应用进口的和国
广西科学 1998年8月 第5卷第3期
时,聚沉的上限pH值6137,下限pH值4110。
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表2表明聚沉作用沉淀量随时间而变化,延长时间可使之完全沉淀,但它们聚沉的上限和下限却是不变的。
在表1中,可看到,序号1～4聚沉值上限是6109,下限是3129,而序号5～8,上限为6137,下限为411。虽然在配制缓冲溶液的pH值的区间距离较大,但这差异是明显地存在,这是由于花生品种不同(在表1中序号不同,品种和种植地是不同的),还是浸取液的pH差异所造成的?!在表2中,是用同一种花生品种,而用不同pH值的浸取液,结果仍出现象表1一样的现象,由此可见造成聚沉pH值的上限不同的和下限的不同,是由于浸取液的pH值不同而引起的。 在文献[6],我们用等电聚焦电泳方法对花生蛋白乳状液进行分析,获得谱带11条,其中明显的6条,其等电点为413,414,511,514,615,617pH值614把等电点为615,61表1记录中,6109pH值8～10的浸取液,pH值为7～8,则上限为6137,可见是提高了花生蛋白质浸取率。这可能就是用不同pH值的浸取液,乳状液花生蛋白质的聚沉值上限不同的原因。这个发现,为了从花生中提高蛋白质浸取率,可提高浸取液的pH值。
用pH值8～10的浸取液,得到的乳状液pH值7～8,则上限为6137,但仍与等电点为615,617的花生蛋白质相对应的聚沉值不一致,当然这可能由于配制的缓冲溶液pH值间隔较大所起的误差,或由胶体聚沉作用理论所说的,两种胶体总电荷量不相等时,只能引起部分沉淀或完全不聚沉来解释。前者可用来解释615这一点,后者可用来解释617点。另在用pH值8～10为浸取液的,下限聚沉值pH值为411,而用pH值614的却为3129,它们相差甚远,如果仍用上述两点说法解释,似有点勉强,而且总觉得不确实,应用花生蛋白脂肪乳状液的盐酸滴定曲线可以得到聚沉pH值上限和下限值的判定。 在花生蛋白脂肪乳状液盐酸滴定的实测pH值与理论pH值对比曲线中,可以明显地看成是由AB,BC,CD,DF四条直线段组成,B、C、D3个拐点的相应的实测pH值为3125,4128,6140,这与表1、表2测定的,用pH值8～10,和pH值614浸取研磨制得的乳状液的聚沉作用的上限和下限值基本一致。这佐证了聚沉作用上限和下限值的存在。这似乎也证明
了,用稀盐酸滴定花生蛋白脂肪乳状液时,DF是中和乳状液中的游离碱,CD是中和花生蛋白分子中的羧基COO-,BC是中和NH2基,AB则是形成过剩的游离酸。AB、DF线段的斜率较大,CD次之,BC更次之。
4 小结
花生蛋白脂肪乳状液中的花生蛋白质的聚沉作用,系在一个pH值区间发生,但由于浸取液pH值不同,聚沉pH值区间的上限和下限值有所不同,用pH值614的蒸馏水浸磨得到的花生蛋白脂肪乳状液的pH值为612,聚沉pH值的上限和下限值为6106～3117;而浸取液pH值在9～10,pH值7～8时,则聚沉值41滴定p,ppH值,:3125,4128,6140,,在聚沉pH值区间,静置3h后观察,于pH值4156～5172区间沉淀最多,经长时间静置,则在聚沉pH值区间几乎全部产生完全沉淀,上层溶液澄清,但在聚沉pH值区间之外,原不发生聚沉的,依然不发生聚沉。在花生蛋白脂肪乳状液
),常压下,通CO2,则花生蛋白发生中,于常温(22℃
聚沉,当通入CO2达饱和时,溶液的pH值5135。
参考文献
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(责任编辑:蒋汉明 黎贞崇)
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GuangxiSciences,Vol15No13,August1998