树突状细胞与肠道免疫屏障

医堂堡述垫!Q生!!旦箜!!鲞筮!i翅丛!堂世曼丝业i丝坐:卫笪垫!Q:!尘:!垒:№!!兰

-3577・

树突状细胞与肠道免疫屏障

任劲松△(综述),陈

中图分类号:R574.4

文献标识码:A

明旅(审校)

文章编号:1006-2084(2010)23-3577-03

(徐州医学院附属医院感染性疾病科,江苏徐州221002)

摘要:肠相关淋巴组织在防御病毒、细菌、寄生虫等有害侵袭的过程中发挥着重要的屏障作用,其中肠道树突状细胞最为关键。作为最强有力的专职抗原递呈细胞,树突状细胞能够摄取、加工肠道微生物抗原和其他口服抗原,呈递给T细胞、B细胞、自然杀伤细胞等效应淋巴细胞并使之致敏,通过这些致敏淋巴细胞及其合成的特异性抗体、细胞因子清除有害的病原微生物,同时对肠道正常菌群以及口服抗原保持免疫耐受。

关键词:肠相关淋巴组织;树突状细胞;肠道免疫屏障

DendriticCells

Barrier}隰NJ/n,song.cHENMiRg.‘DepartmentofInfectiousMedicalCollege,Xuztwu221002,C^im)ofXuzhouDiseases,AffiliatedHospital

Abstract:Gut—associatedlymphoidtissue(GALl’)playkeyroleinprocessofgutdefenseagainst

dendriticcellsinviru¥e8。bacteria,parasites。etc,especiallygut.AstIlemostpowerfulandprofessional

and

IIBIIHHne

胞等效应细胞。而弥散淋巴

组织为免疫应答的传出区,上

述过程致敏的淋巴细胞迁移至此,通过细胞毒作用、分泌细胞因子和免疫球蛋白,如分泌型免疫球蛋白A(immune

globulin

Gut

A,IrA),发挥生物学

presentingceils,DCsCallcapture,processmicrobialantigensandoralantigens,presenttheseanti-

T卵n吕tocells.BceUs.NKcellsandothereffectorceHs,andactivatethem.A1loftIle∞activatedcellsand

tlleirspecialantibodies.cytokinescancleartheharmfulpathogenicmicroorganisms。ormaintaintolerance

antigen

t0

效应。

2肠道DCs的特性

2.1

normalintestinalfloraandoral

antigen.

来源与分布DCs在

Keywords:Gut.associatedlymphoidtissue;DendriticceUs:Gutimmunebarrier

GALT中的分布范围很广(表

肠道不但是消化器官,还具有保护机体免受病

毒、细菌、寄生虫等病原微生物侵害的屏障功能,对维持机体的“稳态”起着重要的作用。树突状细胞(dendriticcells,DCs)是目前已知的最强有力的一种专职抗原递呈细胞,是机体免疫应答的主要启动者,在免疫应答的诱导中发挥着关键作用。其中,不同亚型、不同成熟阶段的肠道DCs在维持对肠道共生菌、食物抗原的免疫耐受,启动对肠道病原微生物的免疫应答反应,预防控制宿主体内的感染的过程中发挥着重要作用。1肠道屏障功能概述

1)口】,表型和功能也各不相同。静息状态下GALT中DCs密度较低,当外伤、炎性因子、内毒素等刺激时,单核-吞噬细胞系统释放多种趋化因子(如CC类趋

化因子配体9、巨噬细胞炎性蛋白3a),诱导体内的

CD五多能造血干细胞(髓系Des)和部分浆系DCs向GALT迁移,成为不成熟DCs。在此过程中DCs表面表达的趋化因子受体与其迁移的目标密切相关,表达cc趋化因子受体(CC

chemokine

receptor,CCR)6

的CD。,b+DCs在高表达其配体巨噬细胞炎性蛋白3仅的集合淋巴结区和固有层淋巴组织中含量丰富;巨噬细胞炎性蛋白3B能诱导表达CCR7的CD[DCs发生迁移,进入集合淋巴结内的T细胞富集区。2.2识别、摄取抗原迁移至GALT的未成熟DCs具有很强的抗原识别、捕获能力。未成熟DCs通过表面表达的模式识别受体,如Toll样受体(Toll.1ikereceptors,,I'IJRs)、C型凝集素受体介导的胞吞作用摄取来自肠腔中的抗原"J,也可以通过吞饮、吞噬的方

完整的肠道屏障由非免疫屏障和免疫屏障

组成。

1.1非免疫屏障包括:①由肠道黏膜上皮细胞、

上皮细胞间紧密连接构成的机械屏障;②由肠道杯状细胞及上皮细胞分泌的黏蛋白形成的黏液屏障;

③由肠道寄生的双歧杆菌等正常菌群形成的一层菌

膜,具有抑制致病菌定植和生长的功能,即生物屏

式捕获抗原。DCs获取抗原的途径包括:①固有层

DCs的树突突入肠腔,通过其表达的CX3C类趋化因子受体(CX3C

chemokine

障;④由胃肠道分泌的胃酸、胆汁、各种消化酶、溶菌

酶等化学物质组成肠黏膜的化学屏障等。

receptor,CX3CR)l不断直

1.2免疫屏障肠道免疫屏障功能由位于肠黏膜下的肠相关淋巴组织(gut—associatedlymphoidtissue,GALT)执行…,包括黏膜滤泡——集合淋巴结和独

立淋巴结;上皮内和固有层弥散淋巴组织及其产生的细胞因子和免疫球蛋白。其中黏膜滤泡是免疫应答的传人淋巴区,DCs等抗原递呈细胞在此处捕获、加工处理抗原并递呈给T细胞、B细胞、自然杀伤细

接获取肠腔细菌和可溶性抗原。②肠道绒毛状M细

胞(一种覆盖于集合淋巴结上的上皮细胞)通过内吞作用从肠腔摄取分子和颗粒,然后转运到细胞基地底面DCs,为DCs获取肠腔抗原的另一条途径。

③单层肠上皮细胞通过囊泡摄取可溶性抗原,传递至黏膜固有层的DCs。④抗原也可直接透过上皮细

胞连接间隙,被DCs直接摄取。

万方数据

・3578・

医堂筮渣垫!!生!!旦筮!!鲞筮垫翅丛!查世曼!!箜韭些!。旦塑垫!Q:!尘:!鱼:盟!:垫

表1肠道DCs的表型、分布和功能

DCs亚群

分布

功能

集合淋巴结

C)【3CRl+sED未知

CCR6+

sED诱导11Il细胞分化

CDlIb+

SED诱导1112细胞分化和B细胞分泌IgACDs+

IFR诱导11ll细胞分化CDllb—CDs-B2面

SED诱导11ll细胞分化B220+蜘C+(pDc)

sED,fiB.

减少I型干扰素的生成弥散淋巴组织

CDllc“CDllbwkcDl0;

诱导Tregs细胞分化cDllc“一10CX3CRl+cD右

诱导Thl7细胞分化

C01lb“1CDl面

COllc“CDIlb+TLR5+IE?诱导Thl7细胞分化和B细胞分泌IgA

C01lcl。iNOS+TNh+LPB细胞分泌Ⅵ

独立淋巴结

cDllc“cDl矗

诱导Tregs细胞分化CDllc…CDi石

激括111细胞CDneh'COX-2+

口服免疫耐受

注:TNF:肿瘤坏死因子;COX-2:环氧化酶2;SED:滤泡圆顶区;IFR:滤泡间区;LP:固有层;IE:上皮内层;Tre挚:调节性T细胞;Th:辅助性T细胞

2.3处理、递呈抗原摄取了抗原的未成熟DCs在GALT特殊的微环境下,细胞表面趋化因子受体表达发生变化,在趋化因子的作用下向黏膜滤泡T区迁

移,并逐步发育为成熟DCs。主要表现为Des将抗

原分子降解成多肽并与DCs自身合成的主要组织相容性复合体(majorhistocompatibilitycomplex,MHC)结合,形成的抗原肽一MHC分子复合物被转运至细胞表面;DCs表达B7.1、B7-2等共刺激分子;DCs旁分泌或自分泌多种细胞因子。成熟DCs通过抗原肽.

MHC分子复合物、共刺激分子给T细胞提供活化所需的双信号,在细胞因子的共同作用下,激活T细

胞,介导免疫应答或免疫耐受。

2.4免疫效应不同亚型、不同成熟阶段的DCs通过抗原递呈和分泌不同的细胞因子诱导初始淋巴细胞分化、成熟。表达有诸如CCR9、整合素a。B,等趋化因子受体的成熟淋巴细胞Hj,迁移至肠道弥散淋巴组织或病变区域,通过吞噬作用、细胞毒作用、分

泌细胞因子和抗体等途径清除入侵的微生物。部分成熟淋巴细胞则分化为记忆淋巴细胞,长期存于

黏膜。

2.4.1激活T细胞

目前已知的CD4+T细胞亚型

包括Thl、Th2、Thl7和Tregs细胞在肠道均发挥重要的作用。Tregs细胞通过分泌白细胞介素(interleu・kin,IL)10抑制性细胞因子等途径发挥免疫抑制效应、介导免疫耐受,对维持肠道免疫稳态发挥着重要作用。研究表明,固有层和独立淋巴结的CD,矗DCs摄取来自食物和肠道益生菌抗原后,在维生素A的代谢产物视黄酸p1和转化生长因子B存在的条件下可以诱导初始T细胞向Tregs细胞分化[6]。其机制

万方数据

可能是CD,o;bCs上调表达的吲哚胺2,3一双加氧酶可

以降解细胞维持活化和增殖所必需的色氨酸,使局

部组织中的色氨酸耗竭,同时其代谢产物也可以抑

制T细胞的增殖。实验表明,抑制吲哚胺2,3一双加氧酶表达可以导致Tregs细胞分化、增殖障碍,同时

造成Thl细胞和Thl7细胞的分化增加,从而打破免

疫耐受。在诱导Thl7细胞分化的过程中,转化生长因子B也是不可或缺的,但视黄酸则被视为抑制性

因素"J。因此,CD,未DCs可能不具有诱导Thl7细胞

分化的能力。事实上如表1所示,在有害微生物侵袭时,固有层中CD,,b+rIILR5+DCs旧1以及表达CX3CRl的CD,0—3DCs【91诱导初始T细胞向Thl7细胞分化,其中CD。0—3DCs通过其表达的TLR2、TLR4、TLR5等受体摄取抗原后发育成熟,分泌IL-6、转化

生长因子B,诱导Thl7细胞的分化;而CX3CRl+DCs

仅通过表达的受体与细菌生产的三磷酸腺苷结合就

可诱导Thl7细胞分化,无需TLRs提供激活信号。

Thl7细胞分泌的前炎性因子IL一17A等趋化中心粒细胞、巨噬细胞等炎性细胞,通过吞噬作用、细胞毒作用、释放炎性介质介导强烈的炎性反应,达到清除入侵的病原微生物和组织修复的目的。

Thl细胞分泌IL-2、干扰素7等细胞因子,参与细胞介导的免疫应答,在病毒、胞内寄生菌和原虫感染中起保护作用;Th2细胞产生IL4、IL-5、IL-6、IL一10

等细胞因子,主要刺激B细胞增生并产生抗体,与体

液免疫有关。早期的研究证明,抗原刺激后的

CD8

0【+DCs可诱导Thl反应,而CD。q—DCs则诱导

Th2反应。并且CD。a+DCs诱导Thl反应依赖于DCs产生的IL一12,而CD。仅一DCs诱导1312反应则依赖于DCs分泌的IL一10。实验证实,在致病微生物侵

袭时(主要抗原为脂多糖),脾脏来源和固有层来源的DCs分别优势产生IL—12和IL一10。另外,在肠道正常寄生的乳酸杆菌不同亚群协同作用下,固有层

来源的DCs表达不同的共刺激分子、分泌不同的细

胞因子,诱导初始T细胞向,1111或Th2细胞分化【101。其中干酪乳杆菌刺激DCs表达MHC-II和B7-2,分泌IL一12、肿瘤坏死因子Ot诱导初始T细胞向Thl细胞分化;罗伊乳酸杆菌则诱导DCs高表达IL.10、低表

达MHC—II和B7-2,同时抑制其分泌IL.12,最终诱导

Th2细胞分化。最新研究还发现,胃部感染的幽门螺杆菌进入肠道后变形成球形,可以被集合淋巴结中CD。。C+DCs捕获,诱导,1111的分化,达到清除幽门螺杆菌的效果¨“。

与上述C阱细胞分化、成熟相似,来自食物和肠道共生菌的抗原被肠道集合淋巴结和独立淋巴结内

匿堂绫述垫!Q生12旦筮!!鲞筮垫翅丛鲤i趔曼丝业i堂!:旦塑垫!Q:!丝:!垒:№:丝

・3579・

DCs摄取后提呈给CDsT细胞诱导免疫耐受;而髓系DCs摄取致病性抗原往往诱导CD;T细胞分化为细胞毒性T细胞,迁移至病灶的细胞毒性T细胞通过细胞毒作用和分泌细胞因子清除入侵的病原微生物。研究表明,肠道DCs诱导CD。+T细胞表达CCR9、整合素ot。B,等相对特异趋化因子受体,是决定细胞毒性T细胞向肠道弥散淋巴组织和非淋巴区域迁移,而非向脾等处迁移的关键因素¨…。2.4.2激活自然杀伤细胞

自然杀伤细胞通过细

胞毒作用发挥抗感染、抗肿瘤作用。在非特异性免疫机制中,DCs和自然杀伤细胞之间的作用是双向的,即DCs可以诱导自然杀伤细胞分化成熟、自然杀伤细胞也可以诱导未成熟DCs的成熟¨孔14J。肠道黏膜中的自然杀伤细胞一般活性较低,甚至在幽门螺杆菌导致的胃炎、胃溃疡的发病机制中,GALT中的DCs.自然杀伤细胞相互作用曾经被认为可有可无[11|。但最新体内外实验表明【l5J,胃部幽门螺杆菌可以激活DCs上调表达MHC.II和B7等共刺激分子,同时分泌大量IL一12、干扰素1等细胞因子,诱导自然杀伤细胞和Thl细胞活化,促进清除幽门螺杆菌。试验中发现,被活化的自然杀伤细胞通过大量分泌细胞因子干扰素^r等发挥抗感染效应。另外,在嗜乳酸杆菌的共同作用下,DCs可以激活自然杀

伤细胞¨6|。嗜乳酸杆菌产生的肽聚糖和脂多糖结合

DCs表面受体TLR2,刺激DCs分泌IL—12,从而增强自然杀伤细胞分泌干扰素^y和细胞毒功能。上述实验还发现,DCs激活自然杀伤细胞同时自然杀伤细胞分泌的IL-2和DCs表达的IL-2受体CD:,均上调。因此,DCs-自然杀伤细胞相互作用对肠道免疫功能有着重要的作用。

2.4.3激活B细胞在肠道免疫屏障中,B细胞分泌的IgA和肠上皮细胞合成的分泌片相结合形成分

泌型IgA,具有中和病原、调理吞噬等重要功能。诱导B细胞合成ISA的机制包括以下:①在视磺酸存

在条件下,胸腺依赖性抗原在上述Th2细胞及其自分泌的细胞因子IL-6等、DCs分泌的细胞因子肿瘤

坏死因子/诱导型一氧化氮合成酶等共同作用下介导B细胞成熟、选择性分泌IgA017]。②胸腺非依赖

性抗原在固有层内的DC的直接作用下介导B细胞成熟、分泌IsA¨“。3小结

DCs在肠道免疫功能中起着关键的作用。事实上,如果肠道Des功能失调,会导致炎性肠病、肠源性感染、肠道肿瘤等疾病的发生,而使用益生菌¨引、黏膜佐剂E20]、胸腺肽ot,等调节DCs的治疗手段可以有效地改善肠道免疫屏障功能。但是,DCs作为机

万方数据

体免疫系统的一个成员,其作用离不开所处的内环境如:抗原和致病菌产物浓度;淋巴细胞间的相互作用;局部细胞因子水平;尤其是肠道微环境。因此,有必要进一步研究在肠道微环境下DCs的调节因素以及DCs功能失调的机制,为了解和治疗肠道疾病提供基础。参考文献

MowatAM。VineyJL.Theanatomicalbasisofintestinalimmunity

J】.ImmunolRev,1997,156(1):145.166.

RescignoM.DiSabatinoA.Dendriticcells

inintestinal

hameosta-

sis

and

disease[J].JClinInvest,2009,119(9):2441—2450.

[3]

GranucciF.Ricciardi.CastagnoliP.Interactionsofbacterialpatho-genswithdendriticcellsduringinvasionofmucosalsurfaces[J].CurtOpin

Microbi01.2003,6(1):72-76.

[4]MomJR,BonoMR,ManjunathN,eta1.Selectiveimprintingofgut・

homingTcellsbyPeyer’spatchdendriticcells[J].Nature,2003。

424(6944):88-93.

[5]

SunCM,HallJA,BlankRB,eta1.SmallintestinelaminapropriadendriticcellspromotedenovogenerationofFoxp3Tregcellsvia

retinoic

acid【J].J

Exp

Med,2007,204(8):1775—1785.

[6]

MatteoliG,MazziniE,IlievID,eta1.GutCDl盎dendritic

cells

exo

pressindoleamine2.3.dioxygenasewhichinfluences

Tregulatory/

Teffectorcellbalanceandoraltolerance

induction[J].Gut,2010,

59(5):595-604.

[7]

MucidaD,ParkY,KimG,et耐.ReciprocalTHl7andregulatoryTcelldifferentiationmediatedbyretinoicacid[J].Science,2007,

317(5835):256-260.

[8]Denning

TL,WangYC,PatelSR,甜a1.Laminapmpriamacropha-

ges

anddendriticcellsdifferentiallyinduceregulatoryandinterleu-kin17・producingTcellresponses[J].Natlmmunol,2007,8(10):1086—1094.

[9]AtarashiK,NishimuraJ,ShimaT,eta/.A11Pdriveslaminapmpria

T(H)17celldifferentiation[J].Nature,2008,455(7214):

808-812.

[10]

ChristensenHR,FmkiacrH,PestkaJJ.Lactobacillidifferentiallymodulateexpressionofcytokinesandmaturationsurfacemarker8in

mufine

dendritic

cells{JI.JImmunol,2002,168(I):171—178.

[11]Ngai

S,MimumH,YamadaT,eta1.RoleofPeyer’spatchesinthe

inductionofHelicobacterpylori・inducedgastritis[J].PrecNailAcadSci

USA,2007,104(21):8971-8976.

[12]

EksteenB,MoraJR,HaughtonEL,et“.GuthomingreceptorsonCDRTceilsareretinoicaciddependentandnotmaintainedbyliverdendriticor咖ualecells[J].Gastroenterology,2009,137(1):

320.329.

13

IGerosaF,Gobbi

A,gorzi

P,eta/.ThereciprocalinteractionofNKceU8withplasmacytoid

or

myeloiddendriticcellsprofoundlyaffects

innateresistance

functions[J].JImmunol,2c105,174(2):727-734.

[14]Semino

C,AngeliniG,PoggiA,eta1.NK/iDCinteractionresultsinIL一18

secretionbyDCsatthesynapticcleftfollowedbyNKcellac—

tivation

andreleaseoftheDCmaturationfactorHMGBl[J].Blood,2005,106(2):609-616.

『15]HafsiN.VolandP,SchwendyS,eta/.Hulnandendriticcellsre.

spondtoHelicobacterpylori,promotingNKcellandThl.effectorresponsesinvitro【J].Jlmmunol,2004,173(2):1249-1257.

[16]FiIll【LN.ZeuthenLH。ChristensenHR,eta/.Distinctgut.derived

lacticacidbacteriaelicitdivergentdendriticcell—mediated

NKcell

responses[J].IntImmunol,2007,19(12):1319-1327.

[17】MacphersonAJ,UhrT.InductionofprotectiveI吕Abyintestinal

dendriticcellscarryingcommensalbacteria【Jj.science,2004,303(5664):1662-1665.

[18]Tsuji

M,SuzukiK,Kitamum

H,et

a/.Requirementforlymphoidtissue.inducercells

in

isolated

fouicleformationandTcell—inde-

pendentimmunoglobulinAgeneration

in

tlle

gut[J].Immunity,

2008,29(2):261-271.

[19]熊菲,程茜,刘明方,等.双歧杆菌对小鼠肠道树突状细胞数量

的影响[J].中国微生态学杂志,2005,17(6):405-407.

[20]张小飞,杨倩.几种黏膜免疫佐剂xCd,肠树突状细胞、MHC

II

类分子及核转录因fNF—zB的影响[J].免疫学杂志,2009,25(5):524-528.

收稿日期:20lO伪i20修回日期:2010—11-03

树突状细胞与肠道免疫屏障

作者:作者单位:刊名:英文刊名:年,卷(期):

任劲松, REN Jin-song

徐州医学院附属医院感染性疾病科,江苏,徐州,221002医学综述

MEDICAL RECAPITULATE2010,16(23)

参考文献(20条)

1. Mowat AM;Viney JL The anatomical basis of intestinal immunity[外文期刊] 1997(01)

2. Rescigno M;Di Sabatino A Dendritic cells in intestinal homeostasis and disease[外文期刊] 2009(09)3. Granucci F;Ricciardi-Castagnoli P Interactions of bacterial pathogens with dendritic cells duringinvasion of mucosal surfaces[外文期刊] 2003(01)

4. Mora JR;Bono MR;Manjunath N Selective imprinting of gut-homing T cells by Peyer's patch dendriticcells [外文期刊] 2003(6944)

5. Sun CM;Hall JA;Blank RB Small intestine lamina propria dendritic cells promote de novo generationof Foxp3 T reg cells via retinoic acid[外文期刊] 2007(08)

6. Matteoli G;Mazzini E;Iliev ID Gut CD103 + dendritic cells express indoleamine 2,3-dioxygenasewhich influences T regulatory/T effector cell balance and oral tolerance induction 2010(05)7. Mucida D;Park Y;Kim G Reciprocal TH17 and regulatory T cell differentiation mediated by retinoicacid [外文期刊] 2007(5835)

8. Denning TL;Wang YC;Patel SR Lamina propria macrophages and dendritic cells differentially induceregulatory and interleukin 17-producing T cell responses[外文期刊] 2007(10)

9. Atarashi K;Nishimura J;Shima T ATP drives lamina propria T(H)17 cell differentiation[外文期刊]2008(7214)

10. Christensen HR;Frφkiaer H;Pestka JJ Lactobacilli differentially modulate expression of cytokinesand maturation surface markers in murine dendritic cells[外文期刊] 2002(01)

11. Nagai S;Mimuro H;Yamada T Role of Peyer's patches in the induction of Helicobacter pylori-inducedgastritis [外文期刊] 2007(21)

12. Eksteen B;Mora JR;Haughton EL Gut homing receptors on CD8 T cells are retinoic acid dependent andnot maintained by liver dendritic or stellate cells 2009(01)

13. Gerosa F;Gobbi A;Zorzi P The reciprocal interaction of NK cells with plasmacytoid or myeloiddendritic cells profoundly affects innate resistance functions[外文期刊] 2005(02)

14. Semino C;Angelini G;Poggi A NK/iDC interaction results in IL-18 secretion by DCs at the synapticcleft followed by NK cell activation and release of the DC maturation factor HMGB1[外文期刊]2005(02)

15. Hafsi N;Voland P;Schwendy S Human dendritic cells respond to Helicobacter pylori,promoting NKcell and Th1-effector responses in vitro 2004(02)

16. Fink LN;Zeuthen LH;Christensen HR Distinct gut-derived lactic acid bacteria elicit divergentdendritic cell-mediated NK cell responses[外文期刊] 2007(12)

17. Macpherson AJ;Uhr T Induction of protective IgA by intestinal dendritic cells carrying commensal

bacteria [外文期刊] 2004(5664)

18. Tsuji M;Suzuki K;Kitamura H Requirement for lymphoid tissue-inducer cells in isolated follicleformation and T cell-independent immunoglobulin A generation in the gut[外文期刊] 2008(02)19. 熊菲;程茜;刘明方 双歧杆菌对小鼠肠道树突状细胞数量的影响[期刊论文]-中国微生态学杂志 2005(06)20. 张小飞;杨倩 几种黏膜免疫佐剂对小肠树突状细胞、MHCⅡ类分子及核转录因子NF-κB的影响[期刊论文]-免疫学杂志 2009(05)

本文读者也读过(7条)

1. 董燕. 赵忠正 调节性T细胞及其在肠道免疫中的作用[会议论文]-2009

2. 叶桃. YE Tao 肠道免疫及微环境改变与结直肠癌发生关系的研究进展[期刊论文]-医学综述2010,16(14)3. 凌宗欣. 唐立 树突状细胞与肠道免疫[期刊论文]-中国微生态学杂志2008,20(3)

4. 李品娥. 陈晓琴. 周力 52例艾滋病患者消化系统临床症状分析[期刊论文]-贵州医药2010,34(12)

5. 张清仲. 符林春. 张苗苗. 陈静. 周红燕. 徐培平 肠道天然免疫抗艾滋病病毒作用及中医药干预研究概述[期刊论文]-环球中医药2011,04(5)

6. 杨琳娜. 吴婷. YANG Lin-na. WU Ting 重症急性胰腺炎肠道免疫功能损伤机制的研究进展[期刊论文]-医学综述2009,15(1)

7. 童晓莉. 周勤飞. 王永才. Tong xiaoli. Zhou qinfei. Wang yongcai 动物肠道免疫研究进展[期刊论文]-现代畜牧兽医2005(9)

本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_yxzs201023019.aspx

医堂堡述垫!Q生!!旦箜!!鲞筮!i翅丛!堂世曼丝业i丝坐:卫笪垫!Q:!尘:!垒:№!!兰

-3577・

树突状细胞与肠道免疫屏障

任劲松△(综述),陈

中图分类号:R574.4

文献标识码:A

明旅(审校)

文章编号:1006-2084(2010)23-3577-03

(徐州医学院附属医院感染性疾病科,江苏徐州221002)

摘要:肠相关淋巴组织在防御病毒、细菌、寄生虫等有害侵袭的过程中发挥着重要的屏障作用,其中肠道树突状细胞最为关键。作为最强有力的专职抗原递呈细胞,树突状细胞能够摄取、加工肠道微生物抗原和其他口服抗原,呈递给T细胞、B细胞、自然杀伤细胞等效应淋巴细胞并使之致敏,通过这些致敏淋巴细胞及其合成的特异性抗体、细胞因子清除有害的病原微生物,同时对肠道正常菌群以及口服抗原保持免疫耐受。

关键词:肠相关淋巴组织;树突状细胞;肠道免疫屏障

DendriticCells

Barrier}隰NJ/n,song.cHENMiRg.‘DepartmentofInfectiousMedicalCollege,Xuztwu221002,C^im)ofXuzhouDiseases,AffiliatedHospital

Abstract:Gut—associatedlymphoidtissue(GALl’)playkeyroleinprocessofgutdefenseagainst

dendriticcellsinviru¥e8。bacteria,parasites。etc,especiallygut.AstIlemostpowerfulandprofessional

and

IIBIIHHne

胞等效应细胞。而弥散淋巴

组织为免疫应答的传出区,上

述过程致敏的淋巴细胞迁移至此,通过细胞毒作用、分泌细胞因子和免疫球蛋白,如分泌型免疫球蛋白A(immune

globulin

Gut

A,IrA),发挥生物学

presentingceils,DCsCallcapture,processmicrobialantigensandoralantigens,presenttheseanti-

T卵n吕tocells.BceUs.NKcellsandothereffectorceHs,andactivatethem.A1loftIle∞activatedcellsand

tlleirspecialantibodies.cytokinescancleartheharmfulpathogenicmicroorganisms。ormaintaintolerance

antigen

t0

效应。

2肠道DCs的特性

2.1

normalintestinalfloraandoral

antigen.

来源与分布DCs在

Keywords:Gut.associatedlymphoidtissue;DendriticceUs:Gutimmunebarrier

GALT中的分布范围很广(表

肠道不但是消化器官,还具有保护机体免受病

毒、细菌、寄生虫等病原微生物侵害的屏障功能,对维持机体的“稳态”起着重要的作用。树突状细胞(dendriticcells,DCs)是目前已知的最强有力的一种专职抗原递呈细胞,是机体免疫应答的主要启动者,在免疫应答的诱导中发挥着关键作用。其中,不同亚型、不同成熟阶段的肠道DCs在维持对肠道共生菌、食物抗原的免疫耐受,启动对肠道病原微生物的免疫应答反应,预防控制宿主体内的感染的过程中发挥着重要作用。1肠道屏障功能概述

1)口】,表型和功能也各不相同。静息状态下GALT中DCs密度较低,当外伤、炎性因子、内毒素等刺激时,单核-吞噬细胞系统释放多种趋化因子(如CC类趋

化因子配体9、巨噬细胞炎性蛋白3a),诱导体内的

CD五多能造血干细胞(髓系Des)和部分浆系DCs向GALT迁移,成为不成熟DCs。在此过程中DCs表面表达的趋化因子受体与其迁移的目标密切相关,表达cc趋化因子受体(CC

chemokine

receptor,CCR)6

的CD。,b+DCs在高表达其配体巨噬细胞炎性蛋白3仅的集合淋巴结区和固有层淋巴组织中含量丰富;巨噬细胞炎性蛋白3B能诱导表达CCR7的CD[DCs发生迁移,进入集合淋巴结内的T细胞富集区。2.2识别、摄取抗原迁移至GALT的未成熟DCs具有很强的抗原识别、捕获能力。未成熟DCs通过表面表达的模式识别受体,如Toll样受体(Toll.1ikereceptors,,I'IJRs)、C型凝集素受体介导的胞吞作用摄取来自肠腔中的抗原"J,也可以通过吞饮、吞噬的方

完整的肠道屏障由非免疫屏障和免疫屏障

组成。

1.1非免疫屏障包括:①由肠道黏膜上皮细胞、

上皮细胞间紧密连接构成的机械屏障;②由肠道杯状细胞及上皮细胞分泌的黏蛋白形成的黏液屏障;

③由肠道寄生的双歧杆菌等正常菌群形成的一层菌

膜,具有抑制致病菌定植和生长的功能,即生物屏

式捕获抗原。DCs获取抗原的途径包括:①固有层

DCs的树突突入肠腔,通过其表达的CX3C类趋化因子受体(CX3C

chemokine

障;④由胃肠道分泌的胃酸、胆汁、各种消化酶、溶菌

酶等化学物质组成肠黏膜的化学屏障等。

receptor,CX3CR)l不断直

1.2免疫屏障肠道免疫屏障功能由位于肠黏膜下的肠相关淋巴组织(gut—associatedlymphoidtissue,GALT)执行…,包括黏膜滤泡——集合淋巴结和独

立淋巴结;上皮内和固有层弥散淋巴组织及其产生的细胞因子和免疫球蛋白。其中黏膜滤泡是免疫应答的传人淋巴区,DCs等抗原递呈细胞在此处捕获、加工处理抗原并递呈给T细胞、B细胞、自然杀伤细

接获取肠腔细菌和可溶性抗原。②肠道绒毛状M细

胞(一种覆盖于集合淋巴结上的上皮细胞)通过内吞作用从肠腔摄取分子和颗粒,然后转运到细胞基地底面DCs,为DCs获取肠腔抗原的另一条途径。

③单层肠上皮细胞通过囊泡摄取可溶性抗原,传递至黏膜固有层的DCs。④抗原也可直接透过上皮细

胞连接间隙,被DCs直接摄取。

万方数据

・3578・

医堂筮渣垫!!生!!旦筮!!鲞筮垫翅丛!查世曼!!箜韭些!。旦塑垫!Q:!尘:!鱼:盟!:垫

表1肠道DCs的表型、分布和功能

DCs亚群

分布

功能

集合淋巴结

C)【3CRl+sED未知

CCR6+

sED诱导11Il细胞分化

CDlIb+

SED诱导1112细胞分化和B细胞分泌IgACDs+

IFR诱导11ll细胞分化CDllb—CDs-B2面

SED诱导11ll细胞分化B220+蜘C+(pDc)

sED,fiB.

减少I型干扰素的生成弥散淋巴组织

CDllc“CDllbwkcDl0;

诱导Tregs细胞分化cDllc“一10CX3CRl+cD右

诱导Thl7细胞分化

C01lb“1CDl面

COllc“CDIlb+TLR5+IE?诱导Thl7细胞分化和B细胞分泌IgA

C01lcl。iNOS+TNh+LPB细胞分泌Ⅵ

独立淋巴结

cDllc“cDl矗

诱导Tregs细胞分化CDllc…CDi石

激括111细胞CDneh'COX-2+

口服免疫耐受

注:TNF:肿瘤坏死因子;COX-2:环氧化酶2;SED:滤泡圆顶区;IFR:滤泡间区;LP:固有层;IE:上皮内层;Tre挚:调节性T细胞;Th:辅助性T细胞

2.3处理、递呈抗原摄取了抗原的未成熟DCs在GALT特殊的微环境下,细胞表面趋化因子受体表达发生变化,在趋化因子的作用下向黏膜滤泡T区迁

移,并逐步发育为成熟DCs。主要表现为Des将抗

原分子降解成多肽并与DCs自身合成的主要组织相容性复合体(majorhistocompatibilitycomplex,MHC)结合,形成的抗原肽一MHC分子复合物被转运至细胞表面;DCs表达B7.1、B7-2等共刺激分子;DCs旁分泌或自分泌多种细胞因子。成熟DCs通过抗原肽.

MHC分子复合物、共刺激分子给T细胞提供活化所需的双信号,在细胞因子的共同作用下,激活T细

胞,介导免疫应答或免疫耐受。

2.4免疫效应不同亚型、不同成熟阶段的DCs通过抗原递呈和分泌不同的细胞因子诱导初始淋巴细胞分化、成熟。表达有诸如CCR9、整合素a。B,等趋化因子受体的成熟淋巴细胞Hj,迁移至肠道弥散淋巴组织或病变区域,通过吞噬作用、细胞毒作用、分

泌细胞因子和抗体等途径清除入侵的微生物。部分成熟淋巴细胞则分化为记忆淋巴细胞,长期存于

黏膜。

2.4.1激活T细胞

目前已知的CD4+T细胞亚型

包括Thl、Th2、Thl7和Tregs细胞在肠道均发挥重要的作用。Tregs细胞通过分泌白细胞介素(interleu・kin,IL)10抑制性细胞因子等途径发挥免疫抑制效应、介导免疫耐受,对维持肠道免疫稳态发挥着重要作用。研究表明,固有层和独立淋巴结的CD,矗DCs摄取来自食物和肠道益生菌抗原后,在维生素A的代谢产物视黄酸p1和转化生长因子B存在的条件下可以诱导初始T细胞向Tregs细胞分化[6]。其机制

万方数据

可能是CD,o;bCs上调表达的吲哚胺2,3一双加氧酶可

以降解细胞维持活化和增殖所必需的色氨酸,使局

部组织中的色氨酸耗竭,同时其代谢产物也可以抑

制T细胞的增殖。实验表明,抑制吲哚胺2,3一双加氧酶表达可以导致Tregs细胞分化、增殖障碍,同时

造成Thl细胞和Thl7细胞的分化增加,从而打破免

疫耐受。在诱导Thl7细胞分化的过程中,转化生长因子B也是不可或缺的,但视黄酸则被视为抑制性

因素"J。因此,CD,未DCs可能不具有诱导Thl7细胞

分化的能力。事实上如表1所示,在有害微生物侵袭时,固有层中CD,,b+rIILR5+DCs旧1以及表达CX3CRl的CD,0—3DCs【91诱导初始T细胞向Thl7细胞分化,其中CD。0—3DCs通过其表达的TLR2、TLR4、TLR5等受体摄取抗原后发育成熟,分泌IL-6、转化

生长因子B,诱导Thl7细胞的分化;而CX3CRl+DCs

仅通过表达的受体与细菌生产的三磷酸腺苷结合就

可诱导Thl7细胞分化,无需TLRs提供激活信号。

Thl7细胞分泌的前炎性因子IL一17A等趋化中心粒细胞、巨噬细胞等炎性细胞,通过吞噬作用、细胞毒作用、释放炎性介质介导强烈的炎性反应,达到清除入侵的病原微生物和组织修复的目的。

Thl细胞分泌IL-2、干扰素7等细胞因子,参与细胞介导的免疫应答,在病毒、胞内寄生菌和原虫感染中起保护作用;Th2细胞产生IL4、IL-5、IL-6、IL一10

等细胞因子,主要刺激B细胞增生并产生抗体,与体

液免疫有关。早期的研究证明,抗原刺激后的

CD8

0【+DCs可诱导Thl反应,而CD。q—DCs则诱导

Th2反应。并且CD。a+DCs诱导Thl反应依赖于DCs产生的IL一12,而CD。仅一DCs诱导1312反应则依赖于DCs分泌的IL一10。实验证实,在致病微生物侵

袭时(主要抗原为脂多糖),脾脏来源和固有层来源的DCs分别优势产生IL—12和IL一10。另外,在肠道正常寄生的乳酸杆菌不同亚群协同作用下,固有层

来源的DCs表达不同的共刺激分子、分泌不同的细

胞因子,诱导初始T细胞向,1111或Th2细胞分化【101。其中干酪乳杆菌刺激DCs表达MHC-II和B7-2,分泌IL一12、肿瘤坏死因子Ot诱导初始T细胞向Thl细胞分化;罗伊乳酸杆菌则诱导DCs高表达IL.10、低表

达MHC—II和B7-2,同时抑制其分泌IL.12,最终诱导

Th2细胞分化。最新研究还发现,胃部感染的幽门螺杆菌进入肠道后变形成球形,可以被集合淋巴结中CD。。C+DCs捕获,诱导,1111的分化,达到清除幽门螺杆菌的效果¨“。

与上述C阱细胞分化、成熟相似,来自食物和肠道共生菌的抗原被肠道集合淋巴结和独立淋巴结内

匿堂绫述垫!Q生12旦筮!!鲞筮垫翅丛鲤i趔曼丝业i堂!:旦塑垫!Q:!丝:!垒:№:丝

・3579・

DCs摄取后提呈给CDsT细胞诱导免疫耐受;而髓系DCs摄取致病性抗原往往诱导CD;T细胞分化为细胞毒性T细胞,迁移至病灶的细胞毒性T细胞通过细胞毒作用和分泌细胞因子清除入侵的病原微生物。研究表明,肠道DCs诱导CD。+T细胞表达CCR9、整合素ot。B,等相对特异趋化因子受体,是决定细胞毒性T细胞向肠道弥散淋巴组织和非淋巴区域迁移,而非向脾等处迁移的关键因素¨…。2.4.2激活自然杀伤细胞

自然杀伤细胞通过细

胞毒作用发挥抗感染、抗肿瘤作用。在非特异性免疫机制中,DCs和自然杀伤细胞之间的作用是双向的,即DCs可以诱导自然杀伤细胞分化成熟、自然杀伤细胞也可以诱导未成熟DCs的成熟¨孔14J。肠道黏膜中的自然杀伤细胞一般活性较低,甚至在幽门螺杆菌导致的胃炎、胃溃疡的发病机制中,GALT中的DCs.自然杀伤细胞相互作用曾经被认为可有可无[11|。但最新体内外实验表明【l5J,胃部幽门螺杆菌可以激活DCs上调表达MHC.II和B7等共刺激分子,同时分泌大量IL一12、干扰素1等细胞因子,诱导自然杀伤细胞和Thl细胞活化,促进清除幽门螺杆菌。试验中发现,被活化的自然杀伤细胞通过大量分泌细胞因子干扰素^r等发挥抗感染效应。另外,在嗜乳酸杆菌的共同作用下,DCs可以激活自然杀

伤细胞¨6|。嗜乳酸杆菌产生的肽聚糖和脂多糖结合

DCs表面受体TLR2,刺激DCs分泌IL—12,从而增强自然杀伤细胞分泌干扰素^y和细胞毒功能。上述实验还发现,DCs激活自然杀伤细胞同时自然杀伤细胞分泌的IL-2和DCs表达的IL-2受体CD:,均上调。因此,DCs-自然杀伤细胞相互作用对肠道免疫功能有着重要的作用。

2.4.3激活B细胞在肠道免疫屏障中,B细胞分泌的IgA和肠上皮细胞合成的分泌片相结合形成分

泌型IgA,具有中和病原、调理吞噬等重要功能。诱导B细胞合成ISA的机制包括以下:①在视磺酸存

在条件下,胸腺依赖性抗原在上述Th2细胞及其自分泌的细胞因子IL-6等、DCs分泌的细胞因子肿瘤

坏死因子/诱导型一氧化氮合成酶等共同作用下介导B细胞成熟、选择性分泌IgA017]。②胸腺非依赖

性抗原在固有层内的DC的直接作用下介导B细胞成熟、分泌IsA¨“。3小结

DCs在肠道免疫功能中起着关键的作用。事实上,如果肠道Des功能失调,会导致炎性肠病、肠源性感染、肠道肿瘤等疾病的发生,而使用益生菌¨引、黏膜佐剂E20]、胸腺肽ot,等调节DCs的治疗手段可以有效地改善肠道免疫屏障功能。但是,DCs作为机

万方数据

体免疫系统的一个成员,其作用离不开所处的内环境如:抗原和致病菌产物浓度;淋巴细胞间的相互作用;局部细胞因子水平;尤其是肠道微环境。因此,有必要进一步研究在肠道微环境下DCs的调节因素以及DCs功能失调的机制,为了解和治疗肠道疾病提供基础。参考文献

MowatAM。VineyJL.Theanatomicalbasisofintestinalimmunity

J】.ImmunolRev,1997,156(1):145.166.

RescignoM.DiSabatinoA.Dendriticcells

inintestinal

hameosta-

sis

and

disease[J].JClinInvest,2009,119(9):2441—2450.

[3]

GranucciF.Ricciardi.CastagnoliP.Interactionsofbacterialpatho-genswithdendriticcellsduringinvasionofmucosalsurfaces[J].CurtOpin

Microbi01.2003,6(1):72-76.

[4]MomJR,BonoMR,ManjunathN,eta1.Selectiveimprintingofgut・

homingTcellsbyPeyer’spatchdendriticcells[J].Nature,2003。

424(6944):88-93.

[5]

SunCM,HallJA,BlankRB,eta1.SmallintestinelaminapropriadendriticcellspromotedenovogenerationofFoxp3Tregcellsvia

retinoic

acid【J].J

Exp

Med,2007,204(8):1775—1785.

[6]

MatteoliG,MazziniE,IlievID,eta1.GutCDl盎dendritic

cells

exo

pressindoleamine2.3.dioxygenasewhichinfluences

Tregulatory/

Teffectorcellbalanceandoraltolerance

induction[J].Gut,2010,

59(5):595-604.

[7]

MucidaD,ParkY,KimG,et耐.ReciprocalTHl7andregulatoryTcelldifferentiationmediatedbyretinoicacid[J].Science,2007,

317(5835):256-260.

[8]Denning

TL,WangYC,PatelSR,甜a1.Laminapmpriamacropha-

ges

anddendriticcellsdifferentiallyinduceregulatoryandinterleu-kin17・producingTcellresponses[J].Natlmmunol,2007,8(10):1086—1094.

[9]AtarashiK,NishimuraJ,ShimaT,eta/.A11Pdriveslaminapmpria

T(H)17celldifferentiation[J].Nature,2008,455(7214):

808-812.

[10]

ChristensenHR,FmkiacrH,PestkaJJ.Lactobacillidifferentiallymodulateexpressionofcytokinesandmaturationsurfacemarker8in

mufine

dendritic

cells{JI.JImmunol,2002,168(I):171—178.

[11]Ngai

S,MimumH,YamadaT,eta1.RoleofPeyer’spatchesinthe

inductionofHelicobacterpylori・inducedgastritis[J].PrecNailAcadSci

USA,2007,104(21):8971-8976.

[12]

EksteenB,MoraJR,HaughtonEL,et“.GuthomingreceptorsonCDRTceilsareretinoicaciddependentandnotmaintainedbyliverdendriticor咖ualecells[J].Gastroenterology,2009,137(1):

320.329.

13

IGerosaF,Gobbi

A,gorzi

P,eta/.ThereciprocalinteractionofNKceU8withplasmacytoid

or

myeloiddendriticcellsprofoundlyaffects

innateresistance

functions[J].JImmunol,2c105,174(2):727-734.

[14]Semino

C,AngeliniG,PoggiA,eta1.NK/iDCinteractionresultsinIL一18

secretionbyDCsatthesynapticcleftfollowedbyNKcellac—

tivation

andreleaseoftheDCmaturationfactorHMGBl[J].Blood,2005,106(2):609-616.

『15]HafsiN.VolandP,SchwendyS,eta/.Hulnandendriticcellsre.

spondtoHelicobacterpylori,promotingNKcellandThl.effectorresponsesinvitro【J].Jlmmunol,2004,173(2):1249-1257.

[16]FiIll【LN.ZeuthenLH。ChristensenHR,eta/.Distinctgut.derived

lacticacidbacteriaelicitdivergentdendriticcell—mediated

NKcell

responses[J].IntImmunol,2007,19(12):1319-1327.

[17】MacphersonAJ,UhrT.InductionofprotectiveI吕Abyintestinal

dendriticcellscarryingcommensalbacteria【Jj.science,2004,303(5664):1662-1665.

[18]Tsuji

M,SuzukiK,Kitamum

H,et

a/.Requirementforlymphoidtissue.inducercells

in

isolated

fouicleformationandTcell—inde-

pendentimmunoglobulinAgeneration

in

tlle

gut[J].Immunity,

2008,29(2):261-271.

[19]熊菲,程茜,刘明方,等.双歧杆菌对小鼠肠道树突状细胞数量

的影响[J].中国微生态学杂志,2005,17(6):405-407.

[20]张小飞,杨倩.几种黏膜免疫佐剂xCd,肠树突状细胞、MHC

II

类分子及核转录因fNF—zB的影响[J].免疫学杂志,2009,25(5):524-528.

收稿日期:20lO伪i20修回日期:2010—11-03

树突状细胞与肠道免疫屏障

作者:作者单位:刊名:英文刊名:年,卷(期):

任劲松, REN Jin-song

徐州医学院附属医院感染性疾病科,江苏,徐州,221002医学综述

MEDICAL RECAPITULATE2010,16(23)

参考文献(20条)

1. Mowat AM;Viney JL The anatomical basis of intestinal immunity[外文期刊] 1997(01)

2. Rescigno M;Di Sabatino A Dendritic cells in intestinal homeostasis and disease[外文期刊] 2009(09)3. Granucci F;Ricciardi-Castagnoli P Interactions of bacterial pathogens with dendritic cells duringinvasion of mucosal surfaces[外文期刊] 2003(01)

4. Mora JR;Bono MR;Manjunath N Selective imprinting of gut-homing T cells by Peyer's patch dendriticcells [外文期刊] 2003(6944)

5. Sun CM;Hall JA;Blank RB Small intestine lamina propria dendritic cells promote de novo generationof Foxp3 T reg cells via retinoic acid[外文期刊] 2007(08)

6. Matteoli G;Mazzini E;Iliev ID Gut CD103 + dendritic cells express indoleamine 2,3-dioxygenasewhich influences T regulatory/T effector cell balance and oral tolerance induction 2010(05)7. Mucida D;Park Y;Kim G Reciprocal TH17 and regulatory T cell differentiation mediated by retinoicacid [外文期刊] 2007(5835)

8. Denning TL;Wang YC;Patel SR Lamina propria macrophages and dendritic cells differentially induceregulatory and interleukin 17-producing T cell responses[外文期刊] 2007(10)

9. Atarashi K;Nishimura J;Shima T ATP drives lamina propria T(H)17 cell differentiation[外文期刊]2008(7214)

10. Christensen HR;Frφkiaer H;Pestka JJ Lactobacilli differentially modulate expression of cytokinesand maturation surface markers in murine dendritic cells[外文期刊] 2002(01)

11. Nagai S;Mimuro H;Yamada T Role of Peyer's patches in the induction of Helicobacter pylori-inducedgastritis [外文期刊] 2007(21)

12. Eksteen B;Mora JR;Haughton EL Gut homing receptors on CD8 T cells are retinoic acid dependent andnot maintained by liver dendritic or stellate cells 2009(01)

13. Gerosa F;Gobbi A;Zorzi P The reciprocal interaction of NK cells with plasmacytoid or myeloiddendritic cells profoundly affects innate resistance functions[外文期刊] 2005(02)

14. Semino C;Angelini G;Poggi A NK/iDC interaction results in IL-18 secretion by DCs at the synapticcleft followed by NK cell activation and release of the DC maturation factor HMGB1[外文期刊]2005(02)

15. Hafsi N;Voland P;Schwendy S Human dendritic cells respond to Helicobacter pylori,promoting NKcell and Th1-effector responses in vitro 2004(02)

16. Fink LN;Zeuthen LH;Christensen HR Distinct gut-derived lactic acid bacteria elicit divergentdendritic cell-mediated NK cell responses[外文期刊] 2007(12)

17. Macpherson AJ;Uhr T Induction of protective IgA by intestinal dendritic cells carrying commensal

bacteria [外文期刊] 2004(5664)

18. Tsuji M;Suzuki K;Kitamura H Requirement for lymphoid tissue-inducer cells in isolated follicleformation and T cell-independent immunoglobulin A generation in the gut[外文期刊] 2008(02)19. 熊菲;程茜;刘明方 双歧杆菌对小鼠肠道树突状细胞数量的影响[期刊论文]-中国微生态学杂志 2005(06)20. 张小飞;杨倩 几种黏膜免疫佐剂对小肠树突状细胞、MHCⅡ类分子及核转录因子NF-κB的影响[期刊论文]-免疫学杂志 2009(05)

本文读者也读过(7条)

1. 董燕. 赵忠正 调节性T细胞及其在肠道免疫中的作用[会议论文]-2009

2. 叶桃. YE Tao 肠道免疫及微环境改变与结直肠癌发生关系的研究进展[期刊论文]-医学综述2010,16(14)3. 凌宗欣. 唐立 树突状细胞与肠道免疫[期刊论文]-中国微生态学杂志2008,20(3)

4. 李品娥. 陈晓琴. 周力 52例艾滋病患者消化系统临床症状分析[期刊论文]-贵州医药2010,34(12)

5. 张清仲. 符林春. 张苗苗. 陈静. 周红燕. 徐培平 肠道天然免疫抗艾滋病病毒作用及中医药干预研究概述[期刊论文]-环球中医药2011,04(5)

6. 杨琳娜. 吴婷. YANG Lin-na. WU Ting 重症急性胰腺炎肠道免疫功能损伤机制的研究进展[期刊论文]-医学综述2009,15(1)

7. 童晓莉. 周勤飞. 王永才. Tong xiaoli. Zhou qinfei. Wang yongcai 动物肠道免疫研究进展[期刊论文]-现代畜牧兽医2005(9)

本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_yxzs201023019.aspx


相关内容

  • 肠道菌群的微生态改变与慢性肾脏疾病
  • 中国中西医结合肾病杂志2013年12月第14卷第12期CJITWN,December2013,Vol.14,No.12 ·1035· ·专家论坛· 肠道菌群的微生态改变与慢性肾脏疾病 樊均明①② 马 欣② 文 集① * 樊均明,主任医师.现任泸州医学院副院长,四川大学华西医院教授.硕士.博士生和博士 ...

  • 医学免疫学 (1)
  • 医学免疫学笔记 医学免疫学概念:研究机体免疫系统的组成(免疫器官.免疫细胞和免疫分子).结构及其免疫生物学(生理性的和病理性的)功能的学科, 是基础医学与临床医学之间的桥梁. 免疫学发展简史 一.免疫学的经验时期 (1)我国11世纪开始接种人痘苗,清<种痘心法>中有水苗法的记载. (2) ...

  • 2017年山东省执业药师继续教育试题及标准答案
  • 2017年山东省执业药师继续教育试题及标准答案 ____与宿主的微空间结构形成了一个相互依赖又相互作用的微生态系统 A. 肠道黏膜 B. 肠道常驻菌 C. 肠道上皮细胞 D. 肠道IgA 正确答案:B ____细胞具有杀伤靶细胞的作用 A.B 细胞 B.NK 细胞 C. 树突状细胞 D. 干细胞 正 ...

  • 医学免疫学与微生物学期末复习指导答案
  • 医学免疫学和微生物学综合练习题一.名词解释 1.免疫球蛋白:具有抗体活性或化学结构与抗体相似的球蛋白. 2.病毒体:结构完整.具有感染性的病毒颗粒.特指病毒在细胞内增殖后释放到细胞外的 成熟病毒颗粒,可短暂存活并感染新的宿主细胞.如 HBV.HIV. 3.菌毛:某些细菌菌体表面比鞭毛更细.多.短而直 ...

  • 免疫学试题库 (14)
  • 第十四章 固有免疫系统及其应答 一.单项选择 1. 以下哪个特点不属于固有免疫: A. 作用时相短 B. 非特异作用 C. 不经克隆扩增,即可发挥免疫效应 D. 有免疫记忆 E. 抗原识别谱较广 2. 关于NK 细胞,下述哪项是错误的? A. CD56阳性 B. CD16阳性 C. 表达BCR 和T ...

  • 病原生物学与免疫学习题及答案
  • 免疫学部分 一.概述 [A型题] 1.免疫的概念是: A.机体的抗微生物感染功能 B.机体清除损伤和衰老细胞的功能 C.机体排除非自身物质的功能 D.机体识别.杀灭与清除外来微生物的功能 E.机体识别和排除抗原性物质的功能 2.免疫监视功能低下的后果是 A.易发生肿瘤 B.易发生超敏反应 C.易发生 ...

  • 医学免疫学重点总结
  • 医学免疫学重点总结 医学免疫学重点总结 第一讲 绪论 1.概念: 1).免疫(immunity): 即免除疫病和抵抗疾病的发生.是机体识别"自己", 排除"异己(非己)"过程中所产生的生物学效应的总和,正常情况下是维持内环境稳定的一种生理性防御功能. 2.免疫 ...

  • 医学免疫学每章重点(预防医学专业)
  • 绪论 1.免疫的概念 免疫(Immunity )的概念:"免疫"一词源于拉丁文immunitas ,其本意是免除税赋和差役,引入医学领域则指免除瘟疫(传染病).现代"免疫"概念:是机体识别"自身"与"非.换言之:机体识别非己抗原, ...

  • 免疫组化指标意义
  • 常用免疫组化指标的意义 临床病理中,常用到"肿瘤细胞免疫组化耐药预后标记",但是许多报告单只写阳性结果,不写临床意义,其结果导致许多病人及其拿到一张不知所云的报告单,以为她们不懂得这些结果的意义,有时候医生也解释不清楚,因此收集了大部分"肿瘤细胞免疫组化耐药预后标记&q ...