慢病毒包装步骤

慢病毒包装步骤

慢病毒包装步骤

慢病毒包装简要步骤:

以六孔板中的1孔为例,每个样品需要1×106个293T细胞。

温孵育5min。

3、将DNA溶液和脂质体溶液轻柔混匀。室温孵育20min

4、用胰酶消化并记数293T细胞。用含血清的培养基重悬细胞。

5、在六孔板中每孔,加入1ml含血清的生长培养基,再加入DNA-脂质体复合物。

6、将1ml重悬的293T细胞(1×106个细胞/ml)加入到平板中。37℃CO2孵箱中孵育过夜。

7、转染后48-72h收获含病毒的上清。3000 rpm 离心20min,去除沉淀。

8、病毒上清-80°C贮存。

包装出来的慢病毒对NIH/3T3细胞达90%以上感染效率。

注意事项

1.在慢病毒感染细胞前,为检测病毒上清培养液内病毒的活性,并确定病毒与转染细胞之间的比率,需要确定病毒2. 在慢病毒转染细胞的过程中最重要的一步是融合,只有一些较小的慢病毒载体才能转导进细胞,因此,病毒颗粒的吸附是慢病毒转染的限速步骤。

质粒转染的步骤

1、DNA的量:Lipofectamine 2000=1:2~3

2、细胞密度大约占培养板的80%左右,转染。

3、转染期间不要加抗生素,否则会导致细胞死亡。

步骤如下:以24孔培养板为例

1、转染前一天细胞换新的培养基

2、制备DNA-Lipofectamine 2000复合物,如下:

a、用50ul无血清培养基稀释DNA(0.8g),轻轻混匀;

b、Lipofectamine 2000使用前,轻轻混匀,用48ul无血清培养基稀释2ul Lipofectamine 2000,轻轻混匀,室温孵育5分钟;

c、将a+b的液体加在一起,轻轻混匀,室温孵育20分钟,使DNA-Lipofectamine 2000复合物形成;

3、将100ul DNA-Lipofectamine 2000复合物加入培养板中,轻轻前后摇匀;

4、放入37度孵箱中培养24~48h后,1:10传代,加入G418筛选。加入G418的量最好设几个梯度或者转染前做MTT,找好G418对你所转细胞致死量的浓度。

5、等细胞在G418作用下,长满后冻存几支(保种)。再克隆化培养:将细胞消化后计数50个细胞,加入22ml完全培养基中,混匀,分装在96孔板中(200ul/孔)。第二天在显微镜下,寻找孔中有单个细胞的孔并做标记,等做标记的孔长满后,消化、转移到4孔或6孔培养板中,最后转移到培养瓶中培养,冻存,鉴定。

6、鉴定成功后,建议马上做后续实验,因为在培养过程或冻存中,转进去的基因容易从细胞中掉下来。

慢病毒包装步骤

慢病毒包装步骤

慢病毒包装简要步骤:

以六孔板中的1孔为例,每个样品需要1×106个293T细胞。

温孵育5min。

3、将DNA溶液和脂质体溶液轻柔混匀。室温孵育20min

4、用胰酶消化并记数293T细胞。用含血清的培养基重悬细胞。

5、在六孔板中每孔,加入1ml含血清的生长培养基,再加入DNA-脂质体复合物。

6、将1ml重悬的293T细胞(1×106个细胞/ml)加入到平板中。37℃CO2孵箱中孵育过夜。

7、转染后48-72h收获含病毒的上清。3000 rpm 离心20min,去除沉淀。

8、病毒上清-80°C贮存。

包装出来的慢病毒对NIH/3T3细胞达90%以上感染效率。

注意事项

1.在慢病毒感染细胞前,为检测病毒上清培养液内病毒的活性,并确定病毒与转染细胞之间的比率,需要确定病毒2. 在慢病毒转染细胞的过程中最重要的一步是融合,只有一些较小的慢病毒载体才能转导进细胞,因此,病毒颗粒的吸附是慢病毒转染的限速步骤。

质粒转染的步骤

1、DNA的量:Lipofectamine 2000=1:2~3

2、细胞密度大约占培养板的80%左右,转染。

3、转染期间不要加抗生素,否则会导致细胞死亡。

步骤如下:以24孔培养板为例

1、转染前一天细胞换新的培养基

2、制备DNA-Lipofectamine 2000复合物,如下:

a、用50ul无血清培养基稀释DNA(0.8g),轻轻混匀;

b、Lipofectamine 2000使用前,轻轻混匀,用48ul无血清培养基稀释2ul Lipofectamine 2000,轻轻混匀,室温孵育5分钟;

c、将a+b的液体加在一起,轻轻混匀,室温孵育20分钟,使DNA-Lipofectamine 2000复合物形成;

3、将100ul DNA-Lipofectamine 2000复合物加入培养板中,轻轻前后摇匀;

4、放入37度孵箱中培养24~48h后,1:10传代,加入G418筛选。加入G418的量最好设几个梯度或者转染前做MTT,找好G418对你所转细胞致死量的浓度。

5、等细胞在G418作用下,长满后冻存几支(保种)。再克隆化培养:将细胞消化后计数50个细胞,加入22ml完全培养基中,混匀,分装在96孔板中(200ul/孔)。第二天在显微镜下,寻找孔中有单个细胞的孔并做标记,等做标记的孔长满后,消化、转移到4孔或6孔培养板中,最后转移到培养瓶中培养,冻存,鉴定。

6、鉴定成功后,建议马上做后续实验,因为在培养过程或冻存中,转进去的基因容易从细胞中掉下来。


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